PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構(gòu)成： 1、模板DNA的變性：模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結(jié)合，為下輪反應作準備。 2、模板DNA與引物的退火（復性）：模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結(jié)合。3、引物的延伸：DNA模板--引物結(jié)合物在72℃、DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用下，以dNTP為反應原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復制鏈。重復循環(huán)變性--退火--延伸三...

PCR實驗技術(shù)中的3’RACE-PCR介紹：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作為一個引物結(jié)合位點，以連有SMART寡核營酸序列通用接頭引物的Oligo(dT)30MN作為鎖定引物反轉(zhuǎn)錄合成標準1號鏈cDNA.然后用一個基因特異引物GSP1(genespecificprimer,GSP)作為上游引物，用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作為下游引物，以cDNA1號鏈為模板，進行PCR循環(huán)，把目的基因3‘末端的。DNA的片段擴增出來。 英瀚斯生物，專業(yè)分子檢測平臺做PCR檢測。 大鼠、小鼠血清做pcr檢測哪家好？河南熒光定量pcr實驗...

PCR實驗技術(shù)中的兼并引物PCR（DegeneratePrimer）介紹：兼并引物是指代替編碼單個氨基酸所有不同堿基可能性的不同序列的混合物。兼并度越低，產(chǎn)物特異性越強。設計引物時應盡量選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3’末端兼并，因為3'端末尾3個堿基的退火足以在錯誤位點起始PCR；次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。因此，在引物設計時,比較選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3'端被兼并，因為3'端末尾3個堿基的退火足以在錯誤位點起始PCR;次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。實驗證明，用脫氧肌苷引物進行PCR,可以代替編碼蛋白的多種兼并密碼子中的兼并堿基。英瀚斯生...

細胞長滿80%瓶底或皿底，換培養(yǎng)液，第二天提取RNA(倒掉培養(yǎng)液，5-10ml冰PBS洗滌細胞2次空干)加1ml冰TRizoL,用力振蕩培養(yǎng)瓶使細胞完全脫落，加樣器吹打(吸入1.5ml離心管，旋渦振蕩10秒，室溫靜置5分鐘)加氯仿200ul,漩渦混勻器振蕩10秒，冰盒上靜置10分鐘(40C,8000rpm,5分鐘，)吸取上層水相0.5-0.7ml移至另一1.5ml離心管中，加異丙醇0.5-0.7ml(充分混勻，冰盒上靜置10分鐘，40C,12000rpm,15分)棄上清,加75%冰乙醇1ml,顛倒混勻數(shù)次(40C,12000rpm,15分)棄上清,沉淀快速風干。但不要完全干燥,加DEPC處理去...

PCR實驗技術(shù)中的3’RACE-PCR介紹：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作為一個引物結(jié)合位點，以連有SMART寡核營酸序列通用接頭引物的Oligo(dT)30MN作為鎖定引物反轉(zhuǎn)錄合成標準1號鏈cDNA.然后用一個基因特異引物GSP1(genespecificprimer,GSP)作為上游引物，用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作為下游引物，以cDNA1號鏈為模板，進行PCR循環(huán)，把目的基因3‘末端的。DNA的片段擴增出來。 英瀚斯生物，專業(yè)分子檢測平臺做PCR檢測。 熒光定量pcr和實時定量pcr的區(qū)別？江蘇熒光定量pcr...

PCR出現(xiàn)假陽性的原因分析。引物設計不合適：選擇的擴增序列與非目的擴增序列有同源性，因而在進行PCR擴增時，擴增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短，容易出現(xiàn)假陽性。需重新設計引物。靶序列或擴增產(chǎn)物的交叉污染：這種污染有兩種原因：一是整個基因組或大片段的交叉污染，導致假陽性。這種假陽性可用以下方法解決：①操作時應小心輕柔，防止將靶序列吸入加樣器內(nèi)或濺出離心管外。②除了酶及其他不耐高溫的物質(zhì)外，所有試劑或器材均應高壓消毒。所用離心管均應一次性使用。③必要時，在加標本前，反應管和試劑用紫外線照射，以破壞存在的核酸。二是空氣中的小片段核酸污染，這些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。...

PCR實驗技術(shù)中的直接PCR（DirectPCR）介紹：直接PCR意指直接從樣本中擴增目的DNA，而無需核酸純化。直接PCR中，在高溫變性階段，諸如細胞、組織等材料在獨特的緩沖液中裂解，釋放出DNA。因此這種方法簡化了PCR實驗流程，減少了動手操作的時間，同時可避免純化步驟中DNA的損失。推薦具有高合成能力的DNA聚合酶用于直接PCR擴增。細胞碎片、蛋白、脂質(zhì)和多糖也隨DNA釋放到裂解液中，它們會抑制PCR反應。具有高合成能力的DNA聚合酶可以耐受這些抑制劑，從而使直接PCR成為可能。具有高合成能力的聚合酶通常具有更高靈敏度，因此可從未純化樣本中擴增微量的DNA。熒光定量pcr的ct值怎么分析...

PCR實驗技術(shù)中的錨定PCR（AnchoredPCR）介紹：錨定PCR主要用于分析具有可變末端的DNA序列，Loh等用A-PCR對人外周血淋巴細胞T細胞受體α-鏈的mRNA的多變性進行了分析。先合成cDNA，并用末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶在其3’-可變區(qū)末端加上一個PolyG尾巴。Loh等恒定區(qū)與可變區(qū)連接部位設一個引物，另一個引物是一個具5’-polyG尾巴的引物。帶有PolyG尾巴的引物是一個固定點，它可以并與PolyG尾巴結(jié)合，無論其余部分序列如何，只識別片段末端，利用此法可從前述mRNA中檢出至少20種不同序列，每一種都是獨特的，表明A-PCR不對任何特殊序列有傾向性結(jié)果，可用于T細胞及其它...

PCR產(chǎn)物是否為特異性擴增，其結(jié)果是否準確可靠，必須對其進行嚴格的分析與鑒定，才能得出正確的結(jié)論。PCR產(chǎn)物的分析，可依據(jù)研究對象和目的不同而采用不同的分析方法。凝膠電泳分析：PCR產(chǎn)物電泳，EB溴乙錠染色紫外儀下觀察，初步判斷產(chǎn)物的特異性。PCR產(chǎn)物片段的大小應與預計的一致，特別是多重PCR，應用多對引物，其產(chǎn)物片斷都應符合預訐的大小，這是起碼條件。瓊脂糖凝膠電泳：通常應用1～2%的瓊脂糖凝膠，供檢測用。聚丙烯酰胺凝膠電泳：6～10%聚丙烯酰胺凝膠電泳分離效果比瓊脂糖好，條帶比較集中，可用于科研及檢測分析。酶切分析：根據(jù)PCR產(chǎn)物中限制性內(nèi)切酶的位點，用相應的酶切、電泳分離后，獲得符合理論的...

PCR反應的比較大特點是具有較大擴增能力與極高的靈敏性，但令人頭疼的問題是易污染，極其微量的污染即可造成假陽性的產(chǎn)生。主要原因有：1、標本間交叉污染；2、PCR試劑的污染；3、PCR擴增產(chǎn)物污染；4、實驗室中克隆質(zhì)粒的污染。一個好的實驗室，要時刻注意污染的監(jiān)測，考慮有無污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。1、陽性對照：在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照，它是PCR反應是否成功、產(chǎn)物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。2、陰性對照：每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括：（1）標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定后的正常血清作對照；被檢的...

PCR實驗過程一般分為三步：DNA變性：（90℃-96℃）：雙鏈DNA模板在熱作用下，氫鍵斷裂，形成單鏈DNA退火：（60℃-65℃）：系統(tǒng)溫度降低，引物與DNA模板結(jié)合，形成局部雙鏈。延伸：（70℃-75℃）：在Taq酶（在72℃左右，活性比較好）的作用下，以dNTP為原料，從引物的3′端開始以從5′→3′端的方向延伸，合成與模板互補的DNA鏈。每一循環(huán)經(jīng)過變性、退火和延伸，DNA含量即增加一倍。如圖所示：現(xiàn)在有些PCR因為擴增區(qū)很短，即使Taq酶活性不是比較好也能在很短的時間內(nèi)復制完成，因此可以改為兩步法，即退火和延伸同時在60℃-65℃間進行，以減少一次升降溫過程，提高了反應速度做個pc...

PCR實驗技術(shù)中的RT-PCR介紹：在RT-PCR中，通過逆轉(zhuǎn)錄（RT）將RNA轉(zhuǎn)化為cDNA，然后通過聚合酶鏈式反應（PCR）擴增cDNA（圖1）。利用cDNA擴增步驟，有望對初始RNA進行進一步研究，即便RNA樣本數(shù)量有限或低豐度表達。RT-PCR的常見應用包括表達基因檢測、轉(zhuǎn)錄物變異檢測，以及克隆和測序用cDNA模板制備。由于逆轉(zhuǎn)錄可為PCR擴增和下游實驗提供cDNA模板，因此，它是實驗成功的關(guān)鍵步驟之一。選定的逆轉(zhuǎn)錄酶應對所有樣本均具有**高效率，即便是難轉(zhuǎn)錄RNA樣本，如降解、抑制劑殘留或具有高度二級結(jié)構(gòu)的RNA樣本。一步法和兩步法是兩種**常用的RT-PCR方法，每種方法都具有各自...

PCR實驗技術(shù)中的兼并引物PCR（DegeneratePrimer）介紹：兼并引物是指代替編碼單個氨基酸所有不同堿基可能性的不同序列的混合物。兼并度越低，產(chǎn)物特異性越強。設計引物時應盡量選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3’末端兼并，因為3'端末尾3個堿基的退火足以在錯誤位點起始PCR；次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。因此，在引物設計時,比較選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3'端被兼并，因為3'端末尾3個堿基的退火足以在錯誤位點起始PCR;次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。實驗證明，用脫氧肌苷引物進行PCR,可以代替編碼蛋白的多種兼并密碼子中的兼并堿基。pcr檢...

PCR實驗技術(shù)的發(fā)展歷程，Khorana(1971)等**早提出核酸體外擴增的設想：“經(jīng)DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可合成tRNA基因。”1983年4月的一個星期五晚上，他開車去鄉(xiāng)下別墅的路上,猛然閃現(xiàn)出“多聚酶鏈式反應”的想法。1983年12月，Mullis用同位素標記法看到了10個循環(huán)后的49bp長度的***個PCR片段；1985年，KaryMullis在Cetus公司工作期間，發(fā)明了PCR。Mullis要合成DNA引物來進行測序工作，卻常為沒有足夠多的模板DNA而煩惱。1985年10月25日申請了PCR的**，1987年7月28日批準（**號4...

PCR產(chǎn)物是否為特異性擴增，其結(jié)果是否準確可靠，必須對其進行嚴格的分析與鑒定，才能得出正確的結(jié)論。PCR產(chǎn)物的分析，可依據(jù)研究對象和目的不同而采用不同的分析方法。凝膠電泳分析：PCR產(chǎn)物電泳，EB溴乙錠染色紫外儀下觀察，初步判斷產(chǎn)物的特異性。PCR產(chǎn)物片段的大小應與預計的一致，特別是多重PCR，應用多對引物，其產(chǎn)物片斷都應符合預訐的大小，這是起碼條件。瓊脂糖凝膠電泳：通常應用1～2%的瓊脂糖凝膠，供檢測用。聚丙烯酰胺凝膠電泳：6～10%聚丙烯酰胺凝膠電泳分離效果比瓊脂糖好，條帶比較集中，可用于科研及檢測分析。酶切分析：根據(jù)PCR產(chǎn)物中限制性內(nèi)切酶的位點，用相應的酶切、電泳分離后，獲得符合理論的...

細胞長滿80%瓶底或皿底，換培養(yǎng)液，第二天提取RNA(倒掉培養(yǎng)液，5-10ml冰PBS洗滌細胞2次空干)加1ml冰TRizoL,用力振蕩培養(yǎng)瓶使細胞完全脫落，加樣器吹打(吸入1.5ml離心管，旋渦振蕩10秒，室溫靜置5分鐘)加氯仿200ul,漩渦混勻器振蕩10秒，冰盒上靜置10分鐘(40C,8000rpm,5分鐘，)吸取上層水相0.5-0.7ml移至另一1.5ml離心管中，加異丙醇0.5-0.7ml(充分混勻，冰盒上靜置10分鐘，40C,12000rpm,15分)棄上清,加75%冰乙醇1ml,顛倒混勻數(shù)次(40C,12000rpm,15分)棄上清,沉淀快速風干。但不要完全干燥,加DEPC處理去...

PCR反應的比較大特點是具有較大擴增能力與極高的靈敏性，但令人頭疼的問題是易污染，極其微量的污染即可造成假陽性的產(chǎn)生。主要原因有：1、標本間交叉污染；2、PCR試劑的污染；3、PCR擴增產(chǎn)物污染；4、實驗室中克隆質(zhì)粒的污染。一個好的實驗室，要時刻注意污染的監(jiān)測，考慮有無污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。1、陽性對照：在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照，它是PCR反應是否成功、產(chǎn)物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。2、陰性對照：每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括：（1）標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定后的正常血清作對照；被檢的...

PCR設計引物應遵循以下原則：①引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。②引物擴增跨度：以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。③引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC比較好隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。④避免引物內(nèi)部出現(xiàn)二級結(jié)構(gòu)，避免兩條引物間互補，特別是3'端的互補，否則會形成引物二聚體，產(chǎn)生非特異的擴增條帶。⑤引物3'端的堿基，特別是較末及倒數(shù)第二個堿基，應嚴格要求配對，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。⑥引物中有或能加上合適的酶切位點，被擴增的靶序列比較好有適宜的酶切位...

PCR實驗技術(shù)中的RT-PCR一步法和兩步法的優(yōu)缺點介紹：一步法：利用同一緩沖液，在同一體系中加入逆轉(zhuǎn)錄酶、引物、Taq酶、4種dNTP直接進行mRNA反轉(zhuǎn)錄與PCR擴增。發(fā)現(xiàn)Taq酶不僅具有DNA多聚酶的作用，而且具有反轉(zhuǎn)錄酶活性，可利用其雙重作用在同一體系中直接以mRNA為模板進行反轉(zhuǎn)錄和其后PCR擴增，從而使mRNA的PCR步驟更為簡化。所需樣品量減少到比較低限度，臨床小樣品的檢測非常有利。用一步法擴增可檢測出總RNA中小于1ng的低豐度mRNA.該法可用于低豐度mRNA的cDNA文庫的構(gòu)建及特異cDNA的克隆，并有可能與Taq酶的測序技術(shù)相組合，使得自動反轉(zhuǎn)錄、基因擴增與基因轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物的...

PCR反應的特異性強，其決定因素為：①引物與模板DNA特異正確的結(jié)合；②堿基配對原則；③TaqDNA聚合酶合成反應的忠實性；④靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結(jié)合是關(guān)鍵。引物與模板的結(jié)合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應中模板與引物的結(jié)合（復性）可以在較高的溫度下進行，結(jié)合的特異性明顯增加，被擴增的靶基因片段也就能保持很高的正確度。再通過選擇特異性和保守性高的靶基因區(qū)，其特異性程度就更高。pcr內(nèi)標不出來的原因是什么？湖南什么是pcr怎么選擇pcr是一種在體外擴增特定DNA序列的技術(shù)方法，通過與特定DNA區(qū)域兩端互補的寡核...

pcr防止污染的方法(一)合理分隔實驗室:將樣品的處理、配制PCR反應液、PCR循環(huán)擴增及PCR產(chǎn)物的鑒定等步驟分區(qū)或分室進行。(二)吸樣器:吸樣器污染是一個值得注意的問題。由于操作時不慎將樣品或模板核酸吸入器內(nèi)或粘上器頭是一個嚴重的污染源，因而加樣或吸取模板核酸時要十分小心。(三)預混和分裝PCR試劑:所有的PCR試劑都應小量分裝，如有可能，PCR反應液應預先配制好，然后小量分裝，-20℃保存。以減少重復加樣次數(shù)，避免污染機會。另外，PCR試劑，PCR反應液應與樣品及PCR產(chǎn)物分開保存，不應放于同一冰盒或同一冰箱。(四)防止操作人員污染，使用一次性手套、吸頭、小離心管應一次性使用。(五)設立...

PCR實驗技術(shù)中cDNA第二鏈的合成方法有以下幾種:1、自身引導法合成的單鏈cDNA3'端能夠形成一短的發(fā)夾結(jié)構(gòu)，這就為第二鏈的合成提供了現(xiàn)成的引物，當***鏈合成反應產(chǎn)物的DNA:RNA雜交鏈變性后利用大腸桿菌DNA聚合酶ⅠKlenow片段或反轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA第二鏈，***用對單鏈特異性的S1核酸酶消化該環(huán)，即可進一步克隆。但自身引導合成法較難控制反應，而且用S1核酸酶切割發(fā)夾結(jié)構(gòu)時無一例外地將導致對應于mRNA5'端序列出現(xiàn)缺失和重排，因而該方法目前很少使用。2、置換合成法該方法利用鏈在反轉(zhuǎn)錄酶作用下產(chǎn)生的cDNA:mRNA雜交鏈不用堿變性，而是在dNTP存在下，利用RNA酶H在雜交鏈的...

PCR樣本可分2種，DNA樣本和RNA樣本。一，DNA樣本：已經(jīng)提取好的DNA樣本，負80度保存，干冰運輸；血液樣本，需全血，加入抗凝劑，抗凝管4度保存；組織樣本，需凍存管或干凈滅菌的離心管裝，負80度保存，干冰運輸；細胞樣本，用胰酶消化后的細胞沉淀，負20度或負80度保存。二，RNA樣本：提取好的RNA樣本，負80度保存，干冰運輸；血液樣本，全血，加入抗凝劑，4度冰箱保存；組織樣本，凍存管或干凈滅菌離心管，負80度保存，干冰運輸；細胞樣本，用胰酶消化后的細胞沉淀，負20度或負80度保存。長時間保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS組織和細胞沉淀用Trizol。pcr檢測實驗成功的...

PCR設計引物應遵循以下原則：①引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。②引物擴增跨度：以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。③引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC比較好隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。④避免引物內(nèi)部出現(xiàn)二級結(jié)構(gòu)，避免兩條引物間互補，特別是3'端的互補，否則會形成引物二聚體，產(chǎn)生非特異的擴增條帶。⑤引物3'端的堿基，特別是較末及倒數(shù)第二個堿基，應嚴格要求配對，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。⑥引物中有或能加上合適的酶切位點，被擴增的靶序列比較好有適宜的酶切位...

PCR實驗技術(shù)中的高GC含量PCR（GC-richPCR）介紹：具有高GC含量（>65%）的模板由于G和C堿基間的強氫鍵影響，比較難以擴增。高GC含量序列同時也涉及二級結(jié)構(gòu)。因此，高GC含量序列可使DNA聚合酶在擴增時卡住，從而影響了DNA的合成。為了擴增高GC含量片段，雙鏈模板必須分離，以便引物結(jié)合及DNA聚合酶讀取序列。為了克服強GC相互作用，較常用的方法是依靠PCR添加劑或共溶劑來幫助DNA變性（圖6A），如DMSO。這些試劑通常會降低引物的Tm，所以退火溫度也需做相應的調(diào)整。高合成能力的DNA聚合酶由于其與模板的強結(jié)合能力，有助于高GC含量模板的PCR擴增（圖6B）。高熱穩(wěn)定性DNA聚...

PCR實驗技術(shù)的發(fā)展歷程，Khorana(1971)等**早提出核酸體外擴增的設想：“經(jīng)DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可合成tRNA基因。”1983年4月的一個星期五晚上，他開車去鄉(xiāng)下別墅的路上,猛然閃現(xiàn)出“多聚酶鏈式反應”的想法。1983年12月，Mullis用同位素標記法看到了10個循環(huán)后的49bp長度的***個PCR片段；1985年，KaryMullis在Cetus公司工作期間，發(fā)明了PCR。Mullis要合成DNA引物來進行測序工作，卻常為沒有足夠多的模板DNA而煩惱。1985年10月25日申請了PCR的**，1987年7月28日批準（**號4...

pcr是一種在體外擴增特定DNA序列的技術(shù)方法，通過與特定DNA區(qū)域兩端互補的寡核苷酸為引物（primer）在試管中DNA聚合酶選擇性地單獨復制合成介于兩引物直接的基因片段，如同DNA復制中的半保留復制一樣，新合成的基因片段與模板鏈形成新的DNA雙鏈，經(jīng)反復的變性（denature）引物退火（anerling）和引物延伸（extention）三步循環(huán)，前一循環(huán)合成的DNA鏈成為下一循環(huán)引物結(jié)合的模板，每循環(huán)一次，反應體系的DNA的量就增加一倍，20-30次反復循環(huán)，即可由微量的DNA模板開始獲得大量的DNA特異片段。近年來，PCR迅速發(fā)展，已深入生命科學的各個領(lǐng)域，技術(shù)方法不端完善，基本的PC...

PCR出現(xiàn)非特異性擴增帶的原因分析：PCR擴增后出現(xiàn)的條帶與預計的大小不一致，或大或小，或者同時出現(xiàn)特異性擴增帶與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現(xiàn)，其原因：一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低，及PCR循環(huán)次數(shù)過多有關(guān)。其次，是酶的質(zhì)和量，往往一些來源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶則不出現(xiàn)，酶的量過多有時也會出現(xiàn)非特異性擴增。其對策有：①必要時，重新設計引物。②減低酶的量或調(diào)換另一來源的酶。③降低引物量，適當增加模板量，減少循環(huán)次數(shù)。④適當提高退火溫度或采用二溫度點法(93℃變性，65℃左右退火與延伸，也叫兩步法)。靠譜的pcr檢測外包...

PCR出現(xiàn)假陽性的原因分析。引物設計不合適：選擇的擴增序列與非目的擴增序列有同源性，因而在進行PCR擴增時，擴增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短，容易出現(xiàn)假陽性。需重新設計引物。靶序列或擴增產(chǎn)物的交叉污染：這種污染有兩種原因：一是整個基因組或大片段的交叉污染，導致假陽性。這種假陽性可用以下方法解決：①操作時應小心輕柔，防止將靶序列吸入加樣器內(nèi)或濺出離心管外。②除了酶及其他不耐高溫的物質(zhì)外，所有試劑或器材均應高壓消毒。所用離心管均應一次性使用。③必要時，在加標本前，反應管和試劑用紫外線照射，以破壞存在的核酸。二是空氣中的小片段核酸污染，這些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。...

PCR方法主要可以分為三類：終點PCR、qPCR和dPCR。終點PCR終點PCR是較原始、較簡單的PCR方法，如今仍在被我們普遍使用。使用者只能在PCR反應結(jié)束之后，通過凝膠電泳、毛細管電泳等方法對產(chǎn)物進行檢測。終點PCR本身是無法定量的，因為該反應產(chǎn)出的DNA量不一定能反映較初情況。舉例來說，不同樣品和序列的擴增效率是有差異的。qPCR和dPCR研究者們通過兩種途徑克服了PCR定量分析的挑戰(zhàn)：實時定量PCR（qPCR）和數(shù)字PCR（dPCR）。qPCR主要是利用插入性染料或熒光探針（比如TaqMan），人們可以通過監(jiān)控PCR過程中的熒光強度比較多個樣品的DNA水平。數(shù)字PCR（dPCR）的基...