芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性

來源: 發(fā)布時間:2021-08-14

膜片鉗技術(shù)本質(zhì)上也屬于電壓鉗范疇,兩者的區(qū)別關(guān)鍵在于:①膜電位固定的方法不同;②電位固定的細胞膜面積不同,進而所研究的離子通道數(shù)目不同。電壓鉗技術(shù)主要是通過保持細胞跨膜電位不變,并迅速控制其數(shù)值,以觀察在不同膜電位條件下膜電流情況。因此只能用來研究整個細胞膜或一大塊細胞膜上所有離子通道活動。目前電壓鉗主要用于巨大細胞的全性能電流的研究,特別在分子克隆的卵母細胞表達電流的鑒定中發(fā)揮著其他技術(shù)不能替代的作用。該技術(shù)的主要缺陷是必須在細胞內(nèi)插入兩個電極,對細胞損傷很大,在小細胞如元,就難以實現(xiàn),又因細胞形態(tài)復雜,很難保持細胞膜各處生物特性的一致。膜片鉗技術(shù)實現(xiàn)了小片膜的孤立和高阻封接的形成,增寬了記錄頻帶范圍,提高了分辨率。芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性

芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性,膜片鉗

離子選擇性(selectivity)(大小和電荷)∶某一種離子只能通過與其相應的通道跨膜擴散(安靜∶K>Na100倍、興奮;Na>K10-20倍);各離子通道在不同狀態(tài)下,對相應離子的通透性不同。門控特性(Gating)∶失活狀態(tài)不僅是通道處于關(guān)閉狀態(tài),而且只有在經(jīng)過一個額外刺激使通道從失活關(guān)閉狀態(tài)進入靜息關(guān)閉狀態(tài)后,通道才能再度接受外界刺激而***開放。離子通道的功能(FunctionoflonChannels)1.產(chǎn)生細胞生物電現(xiàn)象,與細胞興奮性相關(guān)。2.神經(jīng)遞質(zhì)的釋放、腺體的分泌、肌肉的運動、學習和記憶3.維持細胞正常形態(tài)和功能完整性膜離子通道的基因變異及功能障礙與許多疾病有關(guān),某些先天性與后天獲得性疾病是離子通道基因缺陷與功能改變的結(jié)果,稱為離子通道?。╥onchannelpathies)。芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性由于電極前列與細胞膜的高阻封接,在電極前列籠罩下的那片膜事實上與膜的其他部分從電學上隔離。

芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性,膜片鉗

膜片鉗放大器是整個實驗系統(tǒng)中的主要,它可用來作單通道或全細胞記錄,其工作模式可以是電壓鉗,也可以是電流鉗。從原理來說,膜片鉗放大器的探頭電路即I-V變換器有兩種基本結(jié)構(gòu)形式,即電阻反饋式和電容反饋式,前者是一種典型的結(jié)構(gòu),后者因用反饋電容取代了反饋電阻,降低了噪聲,所以特別適合較低噪聲的單通道記錄。由于供膜片鉗實驗的專門的計算機硬件及相應的軟件程序的相繼出現(xiàn),使得膜片鉗實驗操作簡便、效率提高。如與EPC-9型膜片鉗放大器(內(nèi)含ITC-16數(shù)據(jù)采集/接口卡)配套使用的軟件PULSE/PULSEFIT,它既可產(chǎn)生刺激波形,控制數(shù)據(jù)采集,又可分析數(shù)據(jù),同時具有用于膜電容監(jiān)測的鎖相放大器,多種軟件功能集成于一體。

Flip-Tip翻轉(zhuǎn)技術(shù)、將一定密度的細胞懸液灌注在玻璃電極中,下降到電極前列的單個細胞通過在電極外施加負壓可以與玻璃電極前列形成穩(wěn)定的高阻封接,打破露在玻璃電極前列開口外的細胞膜就形成了全細胞記錄模式。德國Flyion公司的Flyscreen8500系統(tǒng)采用的就是這一技術(shù),其通量比較高為6,即一次可同時記錄6個細胞。它的***特點是∶(1)仍然采用玻璃毛坯作為電極(2)藥物施加微量、快速。SealChip技術(shù);完全摒棄了玻璃電極,而是采用SealChip平面電極芯片一定密度的細胞懸液灌注在芯片上面,隨機下降到芯片上約1-2μm的孔上并在自動負壓的吸引下形成高阻封接,打破孔下面的細胞膜形成全細胞記錄模式。采用這一技術(shù)的美國Axon(MDS)公司的PatchXpress7000A系統(tǒng)是高通量全自動膜片鉗技術(shù)的典范,是離子通道藥物研發(fā)的**性工具,在國外實驗室和制藥廠***用于hERG通道藥理學的研究。其通量比較高為16,即一次可同時記錄16個細胞同時,其藥物施加微量、快速,不僅用于藥物篩選,還大量用于離子通道的基礎研究。膜片鉗技術(shù)的建立,對生物學科學特別是神經(jīng)科學是一資有重大意義的變革。

芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性,膜片鉗

膜片鉗技術(shù)的創(chuàng)立取代了電壓鉗技術(shù),是細胞電生理研究的一個飛躍,使得離子通道的研究,從宏觀深入到微觀,使昔日的“肉湯生理學(brothphysiology)”與“閃電生理學(lightningphysiology)”在分子水平上結(jié)合起來,使人們對膜通道的認識耳目一新。當前,生理學、生物物理學、生物化學、分子生物學和藥理學等多種學科正在把膜片鉗技術(shù)和膜通道蛋白重組技術(shù)、同位素示蹤技術(shù)和光譜技術(shù)等非電生理技術(shù)結(jié)合起來,協(xié)同對離子通道進行較全的研究。不少實驗室已經(jīng)將基因工程與膜片鉗技術(shù)結(jié)合起來,把通道蛋白有目的地重組于人工膜中進行研究。設想將合成的通道蛋白分子接種入機體以替換有缺陷和異常的通道的功能而達到的目的。小片膜的孤立使對單個離子通道進行研究成為可能。芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性

神經(jīng)遞質(zhì)的釋放、腺體的分泌、肌肉的運動、學習和記憶。芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性

膜片鉗的基本原理則是利用負反饋電子線路,將微電極前列所吸附的一個至幾個平方微米的細胞膜的電位固定在一定水平上,對通過通道的微小離子電流作動態(tài)或靜態(tài)觀察,從而研究其功能。膜片鉗技術(shù)實現(xiàn)膜電流固定的關(guān)鍵步驟是在玻璃微電極前列邊緣與細胞膜之間形成高阻密封,其阻抗數(shù)值可達10~100GΩ(此密封電阻是指微電極內(nèi)與細胞外液之間的電阻)。由于此阻值如此之高,故基本上可看成絕緣,其上之電流可看成零,形成高阻密封的力主要有氫健、范德華力、鹽鍵等。此密封不僅電學上近乎絕緣,在機械上也是較牢固的。又由于玻璃微電極前列管徑很小,其下膜面積只約1μm2,在這么小的面積上離子通道數(shù)量很少,一般只有一個或幾個通道,經(jīng)這一個或幾個通道流出的離子數(shù)量相對于整個細胞來講很少,可以忽略,也就是說電極下的離子電流對整個細胞的靜息電位的影響可以忽略,那么,只要保持電極內(nèi)電位不變,則電極下的一小片細胞膜兩側(cè)的電位差就不變,從而實現(xiàn)電位固定。芬蘭腦片膜片鉗細胞功能特性

與膜片鉗相關(guān)的擴展資料:

【更多】
膜片鉗又稱單通道電流記錄技術(shù),用特制的玻璃微吸管吸附于 細胞表面,使之形成10~100的密封(giga-seal),又稱巨阻封接,被孤立的小膜片面積為μm量級,內(nèi)中*有少數(shù) 離子通道。然后對該膜片實行 電壓鉗位,可測量單個離子通道開放產(chǎn)生的pA(10的負12次方安培)量級的電流,這種通道開放是一種隨機過程。通過觀測單個通道開放和關(guān)閉的電流變化,可直接得到各種 離子通道開放的電流 幅值分布、開放幾率、開放壽命分布等功能參量,并分析它們與 膜電位、離子濃度等之間的關(guān)系。還可把吸管吸附的膜片從細胞膜上分離出來,以膜的外側(cè)向外或膜的內(nèi)側(cè)向外等方式進行實驗研究。這種技術(shù)對 小細胞的 電壓鉗位、改變膜內(nèi)外溶液成分以及施加藥物都很方便。 1976年德國 馬普生物物理化學研究所Neher和Sakmann***在青蛙肌細胞上用雙電極鉗制 膜電位的同時,記錄到ACh***的單通道 離子電流,從而產(chǎn)生了 膜片鉗技術(shù)。