無(wú)錫正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹

來(lái)源: 發(fā)布時(shí)間:2024-05-25

細(xì)胞電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的幾點(diǎn)建議:1.電場(chǎng)強(qiáng)度要合適合適的電場(chǎng)強(qiáng)度對(duì)于電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)非常重要,電場(chǎng)強(qiáng)度不能過(guò)高,過(guò)高會(huì)增加細(xì)胞的死亡率;也不能過(guò)低,過(guò)低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細(xì)胞系具有不同的較佳場(chǎng)強(qiáng)值,實(shí)驗(yàn)前應(yīng)測(cè)定所轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的較佳電場(chǎng)強(qiáng)度。2.細(xì)胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細(xì)胞一般選取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞(15代以內(nèi),傳代后2d)。因?yàn)樘幱趯?duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞分裂旺盛,表面結(jié)構(gòu)致密比穩(wěn)定期的細(xì)胞差,電轉(zhuǎn)后,細(xì)胞膜的恢復(fù)能力強(qiáng),而且處于有絲分裂期的細(xì)胞更容易接受外源DNA由于脂質(zhì)體對(duì)細(xì)胞有一定的毒性,所以轉(zhuǎn)染時(shí)間一般不超過(guò)24小時(shí)。無(wú)錫正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹

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轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時(shí),貼壁細(xì)胞密度為70%-90%,懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時(shí)效果較好。確保轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞沒(méi)有長(zhǎng)滿或處于靜止期。因?yàn)檗D(zhuǎn)染效率對(duì)細(xì)胞密度很敏感,所以在不同實(shí)驗(yàn)間保持一個(gè)基本的傳代步驟很重要。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量。在三種不同密度進(jìn)行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說(shuō)明,對(duì)于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽(yáng)離子脂質(zhì)體試劑的量會(huì)因細(xì)胞密度而異金華北京細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。

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細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的方法有哪些:1.脂質(zhì)體法。中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細(xì)胞膜內(nèi)。帶正電的陽(yáng)離子脂質(zhì)體則不同,DNA并沒(méi)有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負(fù)電的DNA自動(dòng)結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽(yáng)離子脂質(zhì)體復(fù)合物,從而吸附到帶負(fù)電的細(xì)胞膜表面,經(jīng)過(guò)內(nèi)吞被導(dǎo)入細(xì)胞。脂質(zhì)體法始于1987年,此法的出現(xiàn)使得轉(zhuǎn)染效率、轉(zhuǎn)染的穩(wěn)定性和可重復(fù)性較大提高。陽(yáng)離子脂質(zhì)體細(xì)胞毒性相對(duì)較高,對(duì)不同的細(xì)胞可能會(huì)干擾細(xì)胞的代謝。2.非脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染。較新的納米聚合物轉(zhuǎn)染試劑,如Entranster試劑,納米材料,細(xì)胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高,漸漸成為各大實(shí)驗(yàn)室的選擇轉(zhuǎn)染試劑。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):細(xì)胞狀態(tài)這點(diǎn)非常重要,不要急于求成,一定要讓細(xì)胞處于較佳的生長(zhǎng)狀態(tài)再做。有文獻(xiàn)說(shuō)傳代不要超過(guò)17代。細(xì)胞復(fù)蘇后的3代左右時(shí)細(xì)胞狀態(tài)較好,不要用傳了很多代的細(xì)胞去做,細(xì)胞的形態(tài)都會(huì)發(fā)生變化。大多數(shù)已建立的細(xì)胞系都是非整倍體,原代培養(yǎng)包括了表達(dá)不同基因組合的細(xì)胞的混合物。細(xì)胞培養(yǎng)在實(shí)驗(yàn)室中保存數(shù)月和數(shù)年后會(huì)經(jīng)歷突變,總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。這會(huì)導(dǎo)致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細(xì)胞行為的變化。如果隨時(shí)間發(fā)現(xiàn)這種變化,融化一管新鮮的細(xì)胞可能會(huì)恢復(fù)原先的轉(zhuǎn)染活性。因此,如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞以恢復(fù)較佳結(jié)果?;蛘?,幾種來(lái)源于經(jīng)篩選,轉(zhuǎn)染效率較高細(xì)胞亞系的細(xì)胞系現(xiàn)在有售~來(lái)指示細(xì)胞中目標(biāo)基因是否存在,這樣的報(bào)告基因一般可以在轉(zhuǎn)染后一兩天內(nèi)檢測(cè)到。

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細(xì)胞轉(zhuǎn)染之PEI轉(zhuǎn)染法:1.細(xì)胞分盤(pán):通過(guò)胰酶消化收集細(xì)胞,用適當(dāng)?shù)耐耆囵B(yǎng)基以1×105至4×105細(xì)胞/cm2的密度平鋪細(xì)胞于35mm培養(yǎng)皿上(根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要選擇培養(yǎng)皿,使細(xì)胞貼壁后所占面積達(dá)到培養(yǎng)皿總面積的70-90%)。將細(xì)胞置于含5%CO2的37℃溫箱中孵育8-24h,當(dāng)細(xì)胞貼壁完全后即可開(kāi)始轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染前2h換液(用1.5ml無(wú)血清培養(yǎng)基置換舊的培養(yǎng)基)。注:PEI轉(zhuǎn)染法對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)有克制作用,在換液前細(xì)胞幾乎不生長(zhǎng),所以需要密度比較大時(shí)做轉(zhuǎn)染。2.制備PEI-DNA混合物以35mm組織培養(yǎng)皿用240μl反應(yīng)總體積為例。先在無(wú)菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入質(zhì)粒DNA(總量1-3μg為佳),混勻后加入等體積PEI工作液,充分混勻后室溫靜置20-30min,較后將這240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細(xì)胞的細(xì)胞培養(yǎng)基中,輕輕搖動(dòng)平皿混勻后置于含5%CO2的37℃溫箱孵育。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染。金華北京細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

瞬時(shí)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞中,外源基因得以表達(dá)但它們并不會(huì)整合到細(xì)胞的基因組中。無(wú)錫正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹

細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細(xì)胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實(shí)驗(yàn)前做一個(gè)預(yù)實(shí)驗(yàn),比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細(xì)胞,是否加血清,對(duì)不同的細(xì)胞是有不同的影響的,有些細(xì)胞是可以有血清的,有些加血清就會(huì)受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時(shí)左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因?yàn)槠胀ㄞD(zhuǎn)染試劑對(duì)細(xì)胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細(xì)胞的死亡。轉(zhuǎn)染時(shí)不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時(shí)加入。加入過(guò)早會(huì)引起未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的優(yōu)勢(shì)生長(zhǎng),過(guò)晚會(huì)引起較多細(xì)胞死亡??蓪?shí)時(shí)觀察1/5細(xì)胞變圓的時(shí)候加入血清。無(wú)錫正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹