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細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介:實(shí)驗(yàn)原理外源基因進(jìn)入細(xì)胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和細(xì)菌介導(dǎo)法。電擊法是在細(xì)胞上短時(shí)間暫時(shí)性的穿孔讓外源質(zhì)粒進(jìn)入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過(guò)直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進(jìn)入細(xì)胞;細(xì)菌法是利用包裝了外源基因的細(xì)菌傳染細(xì)胞的方法使得其進(jìn)入細(xì)胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實(shí)驗(yàn)條件控制較嚴(yán)、難度較大;細(xì)菌法的前期準(zhǔn)備較復(fù)雜、而且可能對(duì)于細(xì)胞有較大影響;所以現(xiàn)在對(duì)于很多普通細(xì)胞系,一般的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法~一類是瞬時(shí)轉(zhuǎn)染,一類是穩(wěn)定轉(zhuǎn)染(很長(zhǎng)轉(zhuǎn)染)。深圳正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好
細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介實(shí)驗(yàn)步驟:1、細(xì)胞傳代(1)試驗(yàn)準(zhǔn)備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號(hào)筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,消化1分鐘(37。C,5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細(xì)胞完全從壁上脫落下來(lái)為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。(5)用頭多次吹吸,使細(xì)胞完全分散開(kāi)。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)后選擇0.8X106個(gè)細(xì)胞加入一個(gè)35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9)將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。貴陽(yáng)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家直銷通過(guò)緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓。
如何提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)效率:優(yōu)化細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)密切觀察您的細(xì)胞;確保它們狀態(tài)良好。在開(kāi)始轉(zhuǎn)染細(xì)胞之前,先制定一個(gè)適當(dāng)?shù)姆N板方案,使細(xì)胞密度從轉(zhuǎn)染開(kāi)始到結(jié)束都保持較佳狀態(tài)。增加成功幾率—細(xì)胞是轉(zhuǎn)染過(guò)程中的一個(gè)關(guān)鍵元素,它可以是影響結(jié)果的一致性和質(zhì)量的較重要的變量。此外,還常用促有絲分裂刺激物(如,細(xì)菌轉(zhuǎn)化,生長(zhǎng)因子,條件培養(yǎng)基,以及滋養(yǎng)細(xì)胞)來(lái)活化原代培養(yǎng)細(xì)胞。貼壁細(xì)胞相比較懸浮細(xì)胞—在轉(zhuǎn)染效率方面貼壁細(xì)胞和懸浮細(xì)胞之間的差異明顯。天生趨于懸浮的細(xì)胞(如HL60,Jurkat)非常難以轉(zhuǎn)染。相反,天生為貼壁的細(xì)胞(如HEK,CHO)則可適應(yīng)懸浮生長(zhǎng)的條件。
具有細(xì)胞毒性極低、轉(zhuǎn)染后細(xì)胞存活率高,生成可信任的生理學(xué)相關(guān)數(shù)據(jù)。2.操作簡(jiǎn)便、節(jié)省時(shí)間,只需對(duì)X-tremeGENE9DNA轉(zhuǎn)染試劑進(jìn)行簡(jiǎn)單稀釋,再與質(zhì)粒DNA共同孵育,即可直接向細(xì)胞添加反應(yīng)混合物(有無(wú)血清均可)。3.對(duì)于常用細(xì)胞無(wú)需進(jìn)行費(fèi)時(shí)費(fèi)力的優(yōu)化工作。X-tremeGENEHPDNA轉(zhuǎn)染試劑簡(jiǎn)介:X-tremeGENEHPDNA轉(zhuǎn)染試劑是一種高效的無(wú)動(dòng)物源成分的低毒轉(zhuǎn)染試劑,兼容含血清或不含血清的培養(yǎng)基,可用于轉(zhuǎn)染各類真核細(xì)胞(包括昆蟲(chóng)細(xì)胞)以及多種難轉(zhuǎn)染細(xì)胞系。優(yōu)勢(shì):瞬時(shí)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞中,外源基因得以表達(dá)但它們并不會(huì)整合到細(xì)胞的基因組中。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個(gè)大坑:1.不注意細(xì)節(jié)在轉(zhuǎn)染之前更換一次37℃預(yù)溫的培養(yǎng)基,可提高轉(zhuǎn)染效率。脂質(zhì)體和DNA/RNA混合物應(yīng)當(dāng)一滴一滴地滴下來(lái),從培養(yǎng)皿一邊滴到另一邊,邊滴邊輕搖培養(yǎng)皿,以確保均勻分布和避免局部高濃度。這些都是一些細(xì)枝末節(jié),但是,如果不注意的話,也會(huì)造成轉(zhuǎn)染效率低下。2.細(xì)胞狀態(tài)不好細(xì)胞狀態(tài)不好,會(huì)導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低下。一般進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞應(yīng)該處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。如果是貼壁細(xì)胞的話,貼壁率應(yīng)該在70-80%;如果是懸浮細(xì)胞的話,應(yīng)該是6X105個(gè)/孔(24孔板),一般是轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在換液,轉(zhuǎn)染前用無(wú)血清培養(yǎng)基或PBS洗細(xì)胞一次。轉(zhuǎn)染的整個(gè)過(guò)程都不應(yīng)該有物品。瞬時(shí)轉(zhuǎn)染與穩(wěn)定轉(zhuǎn)染常規(guī)轉(zhuǎn)染技術(shù)根據(jù)基因表達(dá)時(shí)間的長(zhǎng)短可分為兩大類。深圳正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好
瞬時(shí)表達(dá)分析所需的人力和時(shí)間比穩(wěn)定表達(dá)少。深圳正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好
細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的方法有哪些:1.電穿孔法。通過(guò)短暫的高電場(chǎng)電脈沖處理細(xì)胞,沿細(xì)胞膜的電壓差異會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞膜的暫時(shí)穿孔。DNA被認(rèn)為是穿過(guò)孔擴(kuò)散到細(xì)胞內(nèi)的。電脈沖和場(chǎng)強(qiáng)的優(yōu)化對(duì)于成功的轉(zhuǎn)染非常重要,因?yàn)檫^(guò)高的場(chǎng)強(qiáng)和過(guò)長(zhǎng)的電脈沖時(shí)間會(huì)不可逆地傷害細(xì)胞膜而裂解細(xì)胞。理論上說(shuō)電穿孔法可用于各種細(xì)胞,且不需要另外采購(gòu)特殊試劑,但需要昂貴的電轉(zhuǎn)儀。此法每次轉(zhuǎn)染需要更多的細(xì)胞和DNA,因?yàn)榧?xì)胞的死亡率高。每種細(xì)胞電轉(zhuǎn)的條件都需要進(jìn)行多次優(yōu)化。2.細(xì)菌介導(dǎo)的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細(xì)菌體系中,經(jīng)過(guò)包裝細(xì)胞的包裝得到改造后的細(xì)菌,再進(jìn)行傳染。優(yōu)點(diǎn)是轉(zhuǎn)染效率特別高,尤其是難以轉(zhuǎn)染的原代細(xì)胞、細(xì)胞。缺點(diǎn)是構(gòu)建細(xì)菌周期長(zhǎng),環(huán)節(jié)多,易出錯(cuò),費(fèi)用也高深圳正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好