免疫組化的抗原修復(fù)
很多抗原的可視性可以通過抗原修復(fù)來提高,抗原修復(fù)可以打破福爾馬林固定時(shí)形成的蛋白質(zhì)交聯(lián),從而使被掩藏的抗原顯現(xiàn)出來??乖迯?fù)技術(shù)包括不同時(shí)間長度的加熱或者利用蛋白酶來做酶消化,例如蛋白酶K,胰蛋白酶或胃蛋白酶。加熱的方法通常會(huì)用到微波爐,高壓鍋,蒸箱或水浴。將樣品在接近100°C高溫加熱20分鐘后再冷卻同等的時(shí)間。**常用的抗原修復(fù)液有a)檸檬酸鹽緩沖劑,pH6.0,b)Tris-EDTA,pH9.0和c)EDTA,pH8.0.如需要可用檸檬酸鹽緩沖劑做抗原修復(fù):檸檬酸鹽緩沖劑配方:10mM檸檬酸鈉,0.05%Tween-20,pH6.0或10mM檸檬酸,0.05%Tween-20,pH6.0將含有檸檬酸鈉或檸檬酸鹽緩沖劑的染色盤放到蒸箱或者水浴中,預(yù)熱到95-100°C。將切片浸沒于染色盤中。蓋子虛掩,孵育20-40分鐘(研究者需自己決定比較好的孵育時(shí)間)。關(guān)掉蒸箱或水浴,將染色盤置于室溫下,讓切片冷卻20分鐘。在TBS-Tween-20中漂洗切片2次,每次2分鐘。開始封閉步驟。 英瀚斯生物為您詳解免疫組化實(shí)驗(yàn)指南!貴州免疫組化哪家好
免疫組化結(jié)果要如何分析?
(1)陽性著色細(xì)胞計(jì)數(shù)法。在40*光鏡下,隨機(jī)選擇不重疊的10個(gè)視野,機(jī)器或人工計(jì)數(shù)陽性著色細(xì)胞,每組3~6張不同動(dòng)物組織切片,然后進(jìn)行組間比較即可。
(2)灰密度分析法。可以通過在不同組別和不同動(dòng)物組織切片上選擇相同區(qū)域、相同條件下用image j進(jìn)行灰密度分析,然后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析即可。
(3)評(píng)分法。用光學(xué)顯微鏡下對(duì)組織切片分別按染色程度(0~3分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽性范圍進(jìn)行評(píng)分(1~4分為0~25%、26~50%、51~75%、76~100%),**終可以分?jǐn)?shù)相加,再進(jìn)行比較。對(duì)于以上這幾種方法,各有利弊,請細(xì)心選擇。要想得到正確結(jié)果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。
英瀚斯生物,專業(yè)病理染色團(tuán)隊(duì),不止做檢測,還有專業(yè)病理分析。 貴州免疫組化哪家好免疫組化樣本如何處理?
免疫組化的局限性。靈敏度高、精確性和特異性是一種理想的cancer標(biāo)記物必須具有的,但至今所發(fā)現(xiàn)的cancer標(biāo)記物還沒有能完全滿足這些標(biāo)準(zhǔn)。某些正常細(xì)胞也分泌一些cancer標(biāo)記物,因此cancer細(xì)胞學(xué)并不是單獨(dú)產(chǎn)生一種標(biāo)記物,即選用一組抗體比單一抗體更有利。在cancer診斷中評(píng)估免疫組化的局限性主要在抗體特異性和解釋方面。在免疫組化操作中都必須有適當(dāng)?shù)年栃耘c陰性對(duì)照,作為技術(shù)完整性質(zhì)量控制,如對(duì)照組被忽略或不理想時(shí),免疫組化染色的結(jié)果要謹(jǐn)慎對(duì)待,免疫組化的正確結(jié)果不僅要依靠技術(shù)步驟上規(guī)范化操作,而且有賴于正確的解釋,在報(bào)告免疫組化染色結(jié)果時(shí)不應(yīng)孤立地解釋,應(yīng)考慮到診斷與鑒別診斷、所應(yīng)用的抗體特性、所研究組織性質(zhì),同時(shí)還要注意假陽性與假陰性結(jié)果的干擾。
免疫組化結(jié)果背景染色較深的原因有哪些?
(1)抗體濃度過高:一抗?jié)舛冗^高是常見的原因之一。解決辦法是,每次使用新抗體前應(yīng)當(dāng)對(duì)其工作濃度進(jìn)行測試,使每一抗體個(gè)體化,找到適合自己實(shí)驗(yàn)室的理想工作濃度,既使是即用型的抗體也應(yīng)如此,不能只簡單的按說明書進(jìn)行染色。
(2)抗體孵育時(shí)間過長或溫度較高:解決辦法是,嚴(yán)格執(zhí)行操作規(guī)程,比較好隨身佩帶報(bào)時(shí)表或報(bào)時(shí)鐘,及時(shí)提醒,避免因遺忘而造成時(shí)間延長?,F(xiàn)在流行的二步法(Polymer)敏感性很高,要求一抗孵育的時(shí)間不是傳統(tǒng)的1小時(shí),而是30分鐘,因此,要根據(jù)染色結(jié)果進(jìn)行調(diào)整。
(3)DAB變質(zhì)和顯色時(shí)間太長:DAB比較好現(xiàn)用現(xiàn)配,如有沉渣應(yīng)進(jìn)行過濾后再用。配制好的DAB不應(yīng)存放時(shí)間太長,因?yàn)樵跊]有酶的情況下,過氧化氫也會(huì)游離出氧原子與DAB產(chǎn)生反應(yīng)而降低DAB的效力,未用完的DAB存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節(jié)約的辦法是不可取的。DAB的顯色比較好在顯微鏡下監(jiān)控,達(dá)到理想的染色程度時(shí)立即終止反應(yīng)。但是當(dāng)染**太多時(shí)或用染色機(jī)時(shí),這樣做似乎不現(xiàn)實(shí),但至少應(yīng)對(duì)一些新的或少用的抗體顯色時(shí)進(jìn)行監(jiān)控,避免顯色時(shí)間過長。
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免疫組化技術(shù)應(yīng)用于臨床cancer良惡性的判斷,英瀚斯生物為您介紹。對(duì)于反應(yīng)性增生還是cancer性增生,可用免疫球蛋白(Ig)的輕鏈抗體檢測B淋巴細(xì)胞增生的單克隆或多克隆性來區(qū)別。在濾泡反應(yīng)性增生時(shí),濾泡反應(yīng)中心的細(xì)胞不表達(dá)細(xì)胞凋亡蛋白(bcl-2),bcl-2陰性;而在濾泡性淋巴瘤中,由于90%以上cancer性濾泡細(xì)胞有bcl-2的高表達(dá),bcl-2陽性。而增殖細(xì)胞核抗原(PCNA),周期素(Cycling),核抗原(Ki-67)通過對(duì)cancer細(xì)胞增生的程度作出評(píng)價(jià),從而提示增生細(xì)胞的良惡性。免疫組化失敗的原因?貴州免疫組化哪家好
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免疫組化實(shí)驗(yàn)流程介紹:
英瀚斯生物為您整理總結(jié)免疫組化詳細(xì)步驟:
1、SP三步法
1)石蠟切片,常規(guī)脫蠟至水。
2)0.3%或3%H2O2去離子水(無色液體)孵育10-30分鐘,以滅活內(nèi)源性過氧化物酶活性。
3)蒸餾水沖洗,PBS浸泡5分鐘
4)候選步驟:采用抗原修復(fù):微波(建議30分鐘內(nèi)4次中火)、高壓、酶修復(fù)方法。自然冷卻,再用3分鐘×3次.
5)血清封閉:室溫15-30分鐘,盡可能與二抗來源一致。傾去,勿洗。
6)滴加適當(dāng)比例稀釋的一抗,37℃孵育2~3小時(shí)或4℃過夜(比較好復(fù)溫)。PBS沖洗,3分鐘×5次。
7)滴加生物素標(biāo)記的二抗,室溫或37℃孵育30分鐘-1h。
8)PBS沖洗,3分鐘×5次。
9)滴加SP(鏈霉親和素-過氧化物酶),室溫或37℃孵育30分鐘-1h。
10)PBS沖洗,3分鐘×5次。
11)顯色劑顯色(DAB等)。
12)自來水充分沖洗。
13)可進(jìn)行復(fù)染,脫水,透明。
14)選擇適當(dāng)?shù)姆馄瑒┓馄?貴州免疫組化哪家好