纖維化疾病動物模型建模評價

1、自發(fā)性**動物模型:未經人為處理;自然發(fā)生;自發(fā)性**的總體評價--動物自發(fā)性**的病因往往是由動物的遺傳特性決定的與人癢的病因有較大距離。各動物**生長速度差異較大很難在限定時間內獲得大量生長均勻的荷瘤動物(tumor-bearinganimals)。因此，自發(fā)性**動物模型很少在抗**藥物的常規(guī)篩選中廣泛應用。2、誘發(fā)性**動物模型:在實驗條件下:使用致*物(carcinogens);誘發(fā)動物發(fā)生**animalmodelofinducedtumor)指使用致*因素(carcinogens)在實驗條件下誘發(fā)動物發(fā)生**的動物模型，它是進行實驗**學研究的常用方法。常用于驗證可疑致*因素的作用也越來越多地應用干**發(fā)生機理的研究及防治效果的觀察上，在**病因學、遺傳學、生物學等方面的研究中有重要地位。由于誘發(fā)因素和條件可人為控制，誘發(fā)率遠高于自然發(fā)病率故在**實驗研究中優(yōu)于自發(fā)瘤。用于誘發(fā)實驗性**的動物種類很多，它們因種族不同而對相同致*因素有不同的反應性。常用的動物以哺乳動物為主，其中嚙齒類動物的使用**多，應用**廣，包括各種大鼠、小鼠、際鼠等。。實驗動物向小型化的發(fā)展趨勢更有利于實驗者的日常管理和實驗操作。纖維化疾病動物模型建模評價

1、動物模型名稱：固定制動致制動應激大鼠模型2、實驗動物種屬：SD大鼠3、實驗動物性別：雄性4、實驗動物年齡：成年5、實驗動物體重：180~220g6、實驗動物環(huán)境：SPF級 。1、實驗方法：采用固定制動方法。大鼠每天固定5~6小時進行制動應激，連續(xù)制動40天。2、檢測標準：模型組大鼠體重增長速度較正常對照緩慢；曠場試驗的結果顯示，造模結束時與正常對照組比較，模型組大鼠的水平穿越格數、垂直運動次數、理毛時間均減少，**格停留時間、糞便粒數均增加；ELISA的結果顯示，造模結束時與正常對照組比較，模型組大鼠CRH、ACTH、CORT含量均明顯增高。浦東新區(qū)大鼠疾病動物模型建模上海東寰為您提供完善的小鼠動物疾病模型。

    r3):5’-atactccgaggcggatcacaa-3’步驟4、鑒定為pirb基因敲入的f0代雄性小鼠7周齡、雌性小鼠6周齡分別與野生型異性小鼠交配獲得f1代雜合子小鼠，圖2為本發(fā)明f1代雜合子小鼠pirb基因敲除小鼠的流程圖，小鼠出生后20天進行pcr鑒定，若有陽性小鼠出生，則表示轉基因已經整合到生殖細胞。(1)通過pcr方法對獲得的f1代小鼠進行基因型的鑒定：(a)dna的提取：方法1：采用takaraminibestuniversalgenomicdnaextractionkit()來獲得高純度的基因組dna。步驟a.每只小鼠剪下一段尾巴(2～5mm)，放入離心管中，加入180μlbuffergl，20μl蛋白激酶k和10μlrnasea。步驟b.將步驟a離心管內于56℃孵育過夜。步驟c.過夜后12000rpm離心2min去除雜質。步驟d.加入200μlbuffergb和200μl無水乙醇，充分混勻。步驟e.將吸附柱放在收集管上，將步驟d得到的樣品加到吸附柱里，12000rpm離心2min，棄掉收集管中液體。步驟f.棄去液體后在吸附柱中加入500μlbufferwa，12000rpm離心1min，棄掉收集管中液體。步驟g.在收集管中加入700μlbufferwb，12000rpm離心1min。棄掉收集管中液體。注意：bufferwb需要與100％乙醇預混，沿管壁加入bufferwb沖走殘余的鹽。步驟h.重復步驟g一次。

    步驟i.將步驟h的吸附柱放入收集管，12000rpm離心2min。步驟j.吸附柱放到一個新的，在吸附柱膜**加入50～200μl滅菌水或者洗脫液，停留5min。(將無菌水或者洗脫液加熱到65℃能夠增加洗脫的得率)。步驟i.基因組dna定量，洗脫的基因組dna可以通過電泳鑒定。方法2：一種低成本基因組dna的粗提方法：步驟a.每只小鼠剪下一段尾巴(2-5mm)，放入離心管中，加入100μl尾部消化緩沖液，注意不要剪尾太長；步驟b.將離心管及其內容物于56℃孵育過夜；步驟c.過夜后將離心管于98℃孵育13min，使蛋白酶k失活；步驟d.在微型離心機以**大轉速旋轉15min，上清直接用于pcr體系(每50μlpcr體系加入上清2μl)。尾消化緩沖液成分：50mmkcl10mmtris-hcl()％tritonx-100(b)長鏈pcr反應：長鏈引物：pcrprimers1(℃):擴增片段：5’armforwardprimer(f1):5’-tacgccacagggagtccaagaatg-3’5’kireverseprimer(r1):5’-gatggggagagtgaagcagaacg-3’pcrprimers2(℃):擴增片段：3’kiforwardprimer(f2):5’-ctgctgtccattccttattccatag-3’3’armreverseprimer(r2):5’-ctggaaatcaggctgcaaatctc-3’pirb基因敲除型有上述兩條擴增片段，野生型等位基因沒有擴增產物。什么是疾病動物模型建模？

    配制成6mg/kg順鉑注射液,按照10ml/kg分別在***天及第八天腹腔注射。實驗建立大鼠卵巢早衰模型1.實驗儀器及材料：如表1所示。表12.實驗方法：①動物信息：sd大鼠，雌性，6-8周，體重180-220g。普通環(huán)境飼養(yǎng)，滅菌飼料飼養(yǎng)，自由飲水。②分組及給藥劑量：如表2所示。表2③給藥途徑及頻率：腹腔注射；2mg、3mg組連續(xù)注射7天；4mg、6mg組***天、第八天注射；對照組連續(xù)7天注射生理鹽水。④病理檢測：末次注射后15天，動物麻醉，采集血液，分離血清，elisa法測定血清中e2、fsh、lh水平變化情況。解剖動物，取卵巢組織稱重，對大鼠的卵巢組織形態(tài)學進行觀察。注射期間每天稱重，給藥后每周稱重兩次，每天進行陰道涂片檢測動情周期。3.統(tǒng)計方法：采用graphpad進行統(tǒng)計分析。所有計量資料均采用均值±標準差表示采用單因素方差分析各組間均值的差異，p＜。4.試驗結果：(3mg組注射完成后*存活一只，不進行統(tǒng)計)如表3、表4、圖1、圖2、圖3所示：①***水平：與空白組相比，2mg組、4mg組、6mg組e2水平均降低，但是只有2mg組有明顯降低(p＜)，如圖1所示；與空白組相比，2mg組、4mg組、6mg組fsh水平均上升，只有2mg組有明顯升高(p＜)，如圖2所示；與空白組相比?？梢試栏窨刂茖嶒灄l件，增強實驗材料的可比性。奉賢區(qū)正規(guī)疾病動物模型建模

小鼠疾病模型應用于轉化醫(yī)學研究中的思路與策略該研究從臨床患者中篩選到潛在的致病基因。纖維化疾病動物模型建模評價

    引起組織壞死，從而導致卵巢功能早衰。技術實現要素：針對上述現有技術，本發(fā)明提供了一種利用順鉑建立大鼠卵巢早衰模型的方法。本發(fā)明根據“順鉑可誘導卵巢細胞凋亡，引起組織壞死，從而導致卵巢功能早衰”這一原理，使用不同濃度及不同方法建立了化療性損傷卵巢早衰動物模型，并對比各種方法間的優(yōu)劣性，篩選出順鉑比較好的濃度及給藥時間，為篩選順鉑導致的卵巢早衰動物模型比較好劑量提供了一種操作簡單，成功率高，結果可靠的實驗方法。本發(fā)明是通過以下技術方案實現的：一種利用順鉑建立大鼠卵巢早衰模型的方法：將劑量為按體重一日2～3mg/kg的順鉑施用于大鼠，施用方式為腹腔注射，施用方法：連續(xù)施用7天，末次注射后第15天，得大鼠卵巢早衰模型。或：將劑量為按體重4～6mg/kg的順鉑施用于大鼠，施用方式為腹腔注射，施用方法：第1天、第8天施用；末次注射后第15天，得大鼠卵巢早衰模型。進一步地，可將順鉑溶于％氯化鈉溶液配置成順鉑注射液，然后注射。所述順鉑，可市場常規(guī)購買得到，比如齊魯制藥公司生產的順鉑。進一步地，注射期間每天稱量大鼠體重，注射后每周稱量2次；末次注射后15天，麻醉取血檢測***水平，取卵巢檢測對比卵巢重量。纖維化疾病動物模型建模評價

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