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細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細(xì)胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同 的。較好是在靠前次實(shí)驗(yàn)前做一個(gè)預(yù)實(shí)驗(yàn),比如:HeLa,293,CHO,COS7, MCF-7,HepG2等細(xì)胞,是否加血清,對(duì)不同的細(xì)胞是有不同的影響的,有些細(xì)胞是可以有血清的,有些加血清就會(huì)受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時(shí)左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因?yàn)槠胀ㄞD(zhuǎn)染試劑對(duì)細(xì)胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細(xì)胞的死亡。轉(zhuǎn)染時(shí)不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時(shí)加入。加入過早會(huì)引起未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的優(yōu)勢(shì)生長(zhǎng),過晚會(huì)引起較多細(xì)胞死亡??蓪?shí)時(shí)觀察1/5細(xì)胞變圓的時(shí)候加入血清。轉(zhuǎn)染技術(shù)轉(zhuǎn)染是將外源遺傳物質(zhì)導(dǎo)入真核細(xì)胞的過程,是細(xì)胞和分子生物學(xué)研究的重要工具。上海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨
細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法:1.脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法陽(yáng)離子脂質(zhì)體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi),形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負(fù)電的細(xì)胞膜吸附,再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進(jìn)入細(xì)胞。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前實(shí)驗(yàn)室較方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質(zhì)體對(duì)細(xì)胞有一定的毒性,所以轉(zhuǎn)染時(shí)間一般不超過24小時(shí)。常用細(xì)胞類型:cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等2.電穿孔轉(zhuǎn)染法電流能夠可逆地?fù)舸┘?xì)胞膜形成瞬時(shí)的水通路或膜上小孔促使DNA分子進(jìn)入胞內(nèi),這種方法就是電穿孔。當(dāng)遇到某些脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染效率很低或幾乎無法轉(zhuǎn)入時(shí)建議用電穿孔法轉(zhuǎn)染。一般情況下,高電場(chǎng)強(qiáng)度會(huì)殺死50%-70% 的細(xì)胞。現(xiàn)在針對(duì)細(xì)胞死亡開發(fā)出了一種電轉(zhuǎn)保護(hù)劑,可以較大的降低細(xì)胞的死亡率,同時(shí)提高電穿孔轉(zhuǎn)染效率。深圳正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家便宜對(duì)大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染。
轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):用于蛋白生產(chǎn)的細(xì)胞的轉(zhuǎn)染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進(jìn)行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達(dá)蛋白,因?yàn)檠宓鞍讜?huì)干擾下游表達(dá)蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對(duì)某一特定細(xì)胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養(yǎng)基低得多)。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應(yīng)用的一種。在含血清時(shí)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞可以適應(yīng)無血清培養(yǎng)基,無蛋白培養(yǎng)基或限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對(duì)于已適應(yīng)無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細(xì)胞,可以使用其培養(yǎng)基進(jìn)行轉(zhuǎn)染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質(zhì)體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介實(shí)驗(yàn)步驟:1、細(xì)胞傳代(1)試驗(yàn)準(zhǔn)備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號(hào)筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,消化1分鐘(37。C,5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細(xì)胞完全從壁上脫落下來為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。(5)用頭多次吹吸,使細(xì)胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)后選擇0.8X106個(gè)細(xì)胞加入一個(gè)35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9)將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。一般的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染 方法多采用脂質(zhì)體法。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染,你至少要掌握以下幾點(diǎn):胞轉(zhuǎn)染是指將外源分子如DNA,RNA等導(dǎo)入真核細(xì)胞的技術(shù)。隨著分子生物學(xué)和細(xì)胞生物學(xué)研究的不斷發(fā)展,轉(zhuǎn)染已經(jīng)成為研究和控制真核細(xì)胞基因功能的常規(guī)工具。在研究基因功能、調(diào)控基因表達(dá)、突變分析和蛋白質(zhì)生產(chǎn)等生物學(xué)試驗(yàn)中,其應(yīng)用越來越普遍??煞譃樗矔r(shí)轉(zhuǎn)染,穩(wěn)定轉(zhuǎn)染等。瞬時(shí)轉(zhuǎn)染是指外源 DNA/RNA 不整合到宿主染色體中,因此一個(gè)宿主細(xì)胞可存在多個(gè)拷貝數(shù),產(chǎn)生高水平的表達(dá),但通常只持續(xù)幾天,多用于啟動(dòng)子和其他調(diào)控元件的分析。一般來說,超螺旋質(zhì)粒 DNA 轉(zhuǎn)染效率較高,在轉(zhuǎn)染后 24-72 h 內(nèi)分析結(jié)果,常常用到一些報(bào)告系統(tǒng)如熒光蛋白,β半乳糖苷酶等來幫助檢測(cè)。穩(wěn)定轉(zhuǎn)染是指外源 DNA 既可以整合到宿主染色體中,也可能作為一種游離體存在。盡管線性 DNA 比超螺旋 DNA 轉(zhuǎn)入量低但整合率高。外源 DNA 整合到染色體中概率很小,通常需要一些選擇性標(biāo)記反復(fù)篩選得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的同源細(xì)胞系。有血清時(shí)的轉(zhuǎn)染 血清一度曾被認(rèn)為會(huì)降低轉(zhuǎn)染效率。珠海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑單價(jià)
對(duì)于真核生物,轉(zhuǎn)染就是原核生物中轉(zhuǎn)化的同義詞。上海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨
細(xì)胞轉(zhuǎn)染常用步驟:1.轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在一個(gè)轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí)。6.到時(shí)后,根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時(shí)。上海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨
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