細(xì)胞轉(zhuǎn)染之PEI 轉(zhuǎn)染法:1.細(xì)胞分盤:通過胰酶消化收集細(xì)胞,用適當(dāng)?shù)耐耆囵B(yǎng)基以 1×105 至 4×105細(xì)胞/cm2 的密度平鋪細(xì)胞于 35 mm 培養(yǎng)皿上(根據(jù)實驗需要選擇培養(yǎng)皿,使細(xì)胞貼壁后所占面積達(dá)到培養(yǎng)皿總面積的 70-90%)。將細(xì)胞置于含 5%CO2 的 37℃溫箱中孵育 8-24 h,當(dāng)細(xì)胞貼壁完全后即可開始轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染前 2 h 換液(用 1.5 ml 無血清培養(yǎng)基置換舊的培養(yǎng)基)。注:PEI轉(zhuǎn)染法對細(xì)胞生長有克制作用,在換液前細(xì)胞幾乎不生長,所以需要密度比較大時做轉(zhuǎn)染。2.制備PEI-DNA 混合物以 35 mm 組織培養(yǎng)皿用 240 μl 反應(yīng)總體積為例。先在無菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入質(zhì)粒 DNA(總量 1-3 μg 為佳),混勻后加入等體積 PEI工作液,充分混勻后室溫靜置 20-30 min ,較后將這 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細(xì)胞的細(xì)胞培養(yǎng)基中,輕輕搖動平皿混勻后置于含 5% CO2的 37℃溫箱孵育。果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞以恢復(fù)較佳結(jié)果。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
如何有效提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗效率:1.選擇高效的轉(zhuǎn)染方法不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,但大多大同小異。轉(zhuǎn)染時應(yīng)跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養(yǎng)的細(xì)胞性質(zhì)不同,質(zhì)粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉(zhuǎn)染效果可能不同,應(yīng)根據(jù)實驗室的具體條件來確定較佳轉(zhuǎn)染條件。2.確保所構(gòu)建載體的質(zhì)量。轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建(細(xì)菌載體,質(zhì)粒DNA,RNA,PCR產(chǎn)物,寡核苷酸等)也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。細(xì)菌載體對特定宿主細(xì)胞傳染效率較高,但不同細(xì)菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細(xì)胞周期,如逆轉(zhuǎn)錄細(xì)菌需侵染分裂期的宿主細(xì)胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構(gòu)建外,載體的形態(tài)及大小對轉(zhuǎn)染效率也有不同的影響,如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的影響。如果基因產(chǎn)物對細(xì)胞有毒性作用,轉(zhuǎn)染也很難進(jìn)行,因此選擇組成或可調(diào)控,強(qiáng)度合適的啟動子也很重要,同時做空載體及其它基因的相同載體構(gòu)建的轉(zhuǎn)染正對照可排除毒性影響的干擾。開封細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷廠家瞬時表達(dá)分析檢測未重組質(zhì)粒DNA上基因的表達(dá)。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.準(zhǔn)備不足做脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的時候,在開展正式實驗前要多做預(yù)試驗,優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件。優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括:脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細(xì)胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉(zhuǎn)的時候,如果電壓太大,往往會發(fā)生細(xì)胞大量死亡的情況。不同的細(xì)胞,需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預(yù)實驗,多摸索條件。對于大多數(shù)細(xì)胞來說,其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外,就是進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。處于對數(shù)生長期的細(xì)胞的抗損傷能力是較強(qiáng)的。細(xì)胞濃度應(yīng)該處于5x106到1x107/mL之間。每次轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒應(yīng)該控制在4-6 μg,如果﹥10μg,轉(zhuǎn)染效率也較大降低。電擊后,應(yīng)該將DNA和細(xì)胞混合液在室溫下放置10分鐘,使細(xì)胞恢復(fù)損傷。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法:細(xì)菌轉(zhuǎn)染:原理:對于用脂質(zhì)體不能實現(xiàn)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,可以采用細(xì)菌轉(zhuǎn)染??捎糜诘鞍踪|(zhì)過表達(dá)或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細(xì)胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉(zhuǎn)染細(xì)胞、原代細(xì)胞的穩(wěn)定性轉(zhuǎn)染。實驗步驟:通過基因克隆生成重組細(xì)菌 → 采用非細(xì)菌法轉(zhuǎn)染包裝細(xì)胞系,擴(kuò)增并分離得到重組細(xì)菌顆?!兓⒌味?xì)菌液→轉(zhuǎn)導(dǎo)目的細(xì)胞(含有細(xì)菌特異性的受體)→去除培養(yǎng)物中的細(xì)菌,并加入新鮮培養(yǎng)基→分析細(xì)胞瞬時基因表達(dá)或沉默情況。通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓。
細(xì)胞電轉(zhuǎn)染實驗的幾點建議:1. 電場強(qiáng)度要合適合適的電場強(qiáng)度對于電轉(zhuǎn)染實驗非常重要,電場強(qiáng)度不能過高,過高會增加細(xì)胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細(xì)胞系具有不同的較佳場強(qiáng)值,實驗前應(yīng)測定所轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的較佳電場強(qiáng)度。2. 細(xì)胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細(xì)胞一般選取處于對數(shù)生長期的細(xì)胞(15代以內(nèi),傳代后2d)。因為處于對數(shù)生長期的細(xì)胞分裂旺盛,表面結(jié)構(gòu)致密比穩(wěn)定期的細(xì)胞差,電轉(zhuǎn)后,細(xì)胞膜的恢復(fù)能力強(qiáng),而且處于有絲分裂期的細(xì)胞更容易接受外源DNA.一類是瞬時轉(zhuǎn)染,一類是穩(wěn)定轉(zhuǎn)染(很長轉(zhuǎn)染)。鄭州正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家批發(fā)價
必須通過對藥物的抗性篩選進(jìn)行擴(kuò)增或通過表型變化進(jìn)行鑒定。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
如何高效率實現(xiàn)細(xì)胞轉(zhuǎn)染:陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細(xì)胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。脂質(zhì)體(liposome)是一種人工膜,在水相中形成具有雙分子層結(jié)構(gòu)的球形封閉囊泡。脂質(zhì)體可以和帶負(fù)電荷的核酸結(jié)合后重新形成復(fù)合物,當(dāng)復(fù)合物接近細(xì)胞膜時,通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體(endosomes)進(jìn)入細(xì)胞,通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓,使內(nèi)體結(jié)構(gòu)破壞,釋放出核酸。隨后DNA復(fù)合物被釋放進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)。對于普通細(xì)胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素,通過實驗優(yōu)化合適的轉(zhuǎn)染條件對于轉(zhuǎn)染效率的提高很重要。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
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