細胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1. 選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉(zhuǎn)染。對大多數(shù)細胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進行轉(zhuǎn)染,48h后收集細胞進行功能檢測。對于原代細胞,可用促有絲分裂刺激物進行細胞活化。2.對于貼壁細胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會嚴重降低細胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會像細菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細胞以除去支原體。4.細胞轉(zhuǎn)染時需要一定的細胞密度,以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜。在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點。上海正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好
如何提高細胞轉(zhuǎn)染效率:1.組織培養(yǎng)試劑優(yōu)化細胞生長條件。只使用新鮮配制的培養(yǎng)基和添加劑,并經(jīng)可能減少所用試劑的變更?;A(chǔ)培養(yǎng)基—目前所使用的各種市售培養(yǎng)基(如,RPMI 1640和DMEM)。培養(yǎng)基的成分包括營養(yǎng)物質(zhì)(氨基酸,葡萄糖),維生素,無機鹽,和緩沖物質(zhì)。有些成分非常不穩(wěn)定,因此如果不在使用時新鮮加入就可能會產(chǎn)生問題。務(wù)必要使培養(yǎng)基避光保存。因為已知有一些組分和緩沖物質(zhì),如HEPES,當(dāng)暴露于光照下就會分解產(chǎn)生細胞毒性物質(zhì)。另外,血清,添加劑,來自于培養(yǎng)箱內(nèi)的污染物、化學(xué)物質(zhì),或/細胞的污染也都可能影響到細胞生理。2.細胞生長狀態(tài)密切觀察您的細胞;確保它們狀態(tài)良好。在開始轉(zhuǎn)染細胞之前,先制定一個適當(dāng)?shù)姆N板方案,使細胞密度從轉(zhuǎn)染開始到結(jié)束都保持較佳狀態(tài)。增加成功幾率—細胞是轉(zhuǎn)染過程中的一個關(guān)鍵元素,它可以是影響結(jié)果的一致性和質(zhì)量的較重要的變量。正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中。
細胞轉(zhuǎn)染實驗注意事項:1.如為貼壁生長細胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,必須應(yīng)用胰酶處理成單細胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,轉(zhuǎn)染當(dāng)日的細胞密度以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜,較好在轉(zhuǎn)染前4h換一次新鮮培養(yǎng)液。2.用于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒DNA必須無蛋白質(zhì),無RNA和其他化學(xué)物質(zhì)的污染,OD260/280比值應(yīng)在1.8以上。3.培養(yǎng)基中的血清在開始準(zhǔn)備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基,因為血清會影響復(fù)合物的形成。其實,只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不含血清,在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。
細胞轉(zhuǎn)染的注意事項:血清A、DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不能含血清,因為血清會影響復(fù)合物的形成。B、一般細胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題,轉(zhuǎn)染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加,但血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細胞,建議使用**轉(zhuǎn)染試劑。有條件的話,可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細胞兩遍,注意洗的時候要輕,靠邊緣緩緩加入液體,然后不要吹吸細胞而是轉(zhuǎn)動培養(yǎng)板讓液體滾動在細胞表面。如果洗的太厲害,細胞又損失一部分,加了脂質(zhì)體后,細胞受影響就更大了,死亡細胞會增多。能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi)。
細胞轉(zhuǎn)染的常用方法:人工脂質(zhì)體法 原理:帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負電的磷酸基團形成復(fù)合物,進而可被細胞內(nèi)吞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染/瞬時性轉(zhuǎn)染。這種方法幾乎適用于所有細胞,轉(zhuǎn)染效率高、重復(fù)型好,但轉(zhuǎn)染時需要去除血清,轉(zhuǎn)染效果隨細胞類型變化大。實驗步驟:在單獨試管中分別稀釋核酸及轉(zhuǎn)染試劑 → 脂質(zhì)體與核酸的磷酸骨架結(jié)合,形成復(fù)合物 → 脂質(zhì)體上的正電荷有助于復(fù)合物與細胞膜結(jié)合 → 復(fù)合物通過內(nèi)吞作用進入胞漿 → 分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。操作簡便,對細胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。青島細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
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細胞轉(zhuǎn)染操作方法:轉(zhuǎn)染 ,是將外源性基因?qū)爰毎麅?nèi)的一種專門技術(shù)。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉(zhuǎn)染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉(zhuǎn)染大致可分為物理介導(dǎo)、化學(xué)介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因?qū)儆谕ㄟ^物理方法將基因?qū)爰毎姆独?;化學(xué)介導(dǎo)方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù);生物介導(dǎo)方法,有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染,和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。理想細胞轉(zhuǎn)染方法,應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),是目前轉(zhuǎn)染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是,細菌轉(zhuǎn)染方法的準(zhǔn)備程序復(fù)雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點。上海正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好
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