《數(shù)字化轉(zhuǎn)型和跨學(xué)科實(shí)踐暑期研討會》詳解
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細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的方法有哪些:1..電穿孔法。通過短暫的高電場電脈沖處理細(xì)胞,沿細(xì)胞膜的電壓差異會導(dǎo)致細(xì)胞膜的暫時穿孔。DNA被認(rèn)為是穿過孔擴(kuò)散到細(xì)胞內(nèi)的。電脈沖和場強(qiáng)的優(yōu)化對于成功的轉(zhuǎn)染非常重要,因?yàn)檫^高的場強(qiáng)和過長的電脈沖時間會不可逆地傷害細(xì)胞膜而裂解細(xì)胞。理論上說電穿孔法可用于各種細(xì)胞,且不需要另外采購特殊試劑,但需要昂貴的電轉(zhuǎn)儀。此法每次轉(zhuǎn)染需要更多的細(xì)胞和DNA,因?yàn)榧?xì)胞的死亡率高。每種細(xì)胞電轉(zhuǎn)的條件都需要進(jìn)行多次優(yōu)化。2.細(xì)菌介導(dǎo)的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細(xì)菌體系中,經(jīng)過包裝細(xì)胞的包裝得到改造后的細(xì)菌,再進(jìn)行傳染。重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。徐州廣州細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.設(shè)置陰性和陽性對照:一般在轉(zhuǎn)染后24-48h,靶基因即在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)??梢罁?jù)不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康模?4-48h后即可進(jìn)行靶基因表達(dá)的檢測等實(shí)驗(yàn)。2.轉(zhuǎn)染后效率的檢測方法:觀察轉(zhuǎn)染后細(xì)胞熒光情況;qPCR驗(yàn)證;WB檢測敲減或過表達(dá)蛋白。3.轉(zhuǎn)染效率低,可采取以下兩種方法:1)復(fù)轉(zhuǎn)染,即轉(zhuǎn)染后12-24h再進(jìn)行轉(zhuǎn)染,前提是該細(xì)胞對脂質(zhì)體的耐受性較好,轉(zhuǎn)染后細(xì)胞死亡數(shù)較少。2)通過藥篩來殺死未轉(zhuǎn)入成功的細(xì)胞,前提是該質(zhì)粒帶有物品抗性的基因。4.電轉(zhuǎn)時,不同的細(xì)胞需要的電壓是不一樣的,需要做預(yù)實(shí)驗(yàn),摸索較佳條件。對于大多數(shù)細(xì)胞而言,較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后,應(yīng)該將DNA和細(xì)胞混合液在室溫下放置10min,使細(xì)胞恢復(fù)損傷。石家莊正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好有血清時的轉(zhuǎn)染 血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率。
轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細(xì)胞密度為70%-90%,懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細(xì)胞沒有長滿或處于靜止期。因?yàn)檗D(zhuǎn)染效率對細(xì)胞密度很敏感,所以在不同實(shí)驗(yàn)間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量。在三種不同密度進(jìn)行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細(xì)胞密度而異。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉(zhuǎn)染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當(dāng)年做轉(zhuǎn)染整整半年,百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn),原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后,立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗(yàn),盡量使用開封半年內(nèi)的,因?yàn)檫^了半年后,就算沒有過失效期,但是細(xì)胞毒性較大增加,而轉(zhuǎn)染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實(shí)驗(yàn)進(jìn)度哈。2.未加血清轉(zhuǎn)染后未及時加入血清,會導(dǎo)致細(xì)胞大量死亡。一般要在轉(zhuǎn)染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗(yàn),其實(shí)也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細(xì)胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清。過早的話,會引起未轉(zhuǎn)染的細(xì)胞瘋狂生長。那么,什么是較佳時機(jī)呢?在20%的細(xì)胞變圓的時候,就是加血清的較佳時機(jī)。再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進(jìn)入細(xì)胞。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法:細(xì)菌轉(zhuǎn)染:原理:對于用脂質(zhì)體不能實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,可以采用細(xì)菌轉(zhuǎn)染??捎糜诘鞍踪|(zhì)過表達(dá)或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細(xì)胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉(zhuǎn)染細(xì)胞、原代細(xì)胞的穩(wěn)定性轉(zhuǎn)染。實(shí)驗(yàn)步驟:通過基因克隆生成重組細(xì)菌→采用非細(xì)菌法轉(zhuǎn)染包裝細(xì)胞系,擴(kuò)增并分離得到重組細(xì)菌顆?!兓⒌味?xì)菌液→轉(zhuǎn)導(dǎo)目的細(xì)胞(含有細(xì)菌特異性的受體)→去除培養(yǎng)物中的細(xì)菌,并加入新鮮培養(yǎng)基→分析細(xì)胞瞬時基因表達(dá)或沉默情況。大部分外源DNA會被核酸酶降解或隨細(xì)胞分裂而稀釋。徐州廣州細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。徐州廣州細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細(xì)胞轉(zhuǎn)染常用步驟:1.轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后,根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時~徐州廣州細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑