蕪湖細胞高效轉染試劑哪里買

來源: 發(fā)布時間:2024-03-20

細胞轉染為什么不能加血清:不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉染后可適時加入。加入過早會引起未轉染細胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。當復合物接近細胞膜時,通過內吞作用形成內體進入細胞。蕪湖細胞高效轉染試劑哪里買

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轉染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。一般轉染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結果說明,對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異石家莊細胞高效轉染試劑哪里買有血清時的轉染 血清一度曾被認為會降低轉染效率。

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大多數已建立的細胞系都是非整倍體,原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變,總染色體重組或基因調控變化等而演化,這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現這種變化,融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。比如,新鮮融化的NIH3T3細胞比傳代8次的細胞表現出更高的轉染效率,融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉染效率。因此,如果觀察到轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結果。

轉染的注意事項:用于蛋白生產的細胞的轉染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達蛋白,因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養(yǎng)基低得多)。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應用的一種。在含血清時轉染的細胞可以適應無血清培養(yǎng)基,無蛋白培養(yǎng)基或限定化學成分的培養(yǎng)基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對于已適應無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細胞,可以使用其培養(yǎng)基進行轉染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質體介導轉染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)和轉染。在瞬時轉染質粒中往往都含有一個報告基。

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細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:脂質體轉染操作步驟:(1)細胞培養(yǎng):取6cm細胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105個細胞培養(yǎng)液,37℃CO2培養(yǎng)密度至40%~60%,密度過大,轉染后不利篩選細胞。(2)轉染液制備:在EP管中制備以下兩液(為轉染每一個孔細胞所用的量)A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋1ug質粒DNA。B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋2ul脂質體。分別將A液與B液輕彈混勻,靜置5分鐘。(3)吸取B液加入至A液中,輕彈混勻。室溫中置10-15分鐘。(4)轉染準備:用1mL不含血清培養(yǎng)液漂洗兩次,再加入4mL不含血清培養(yǎng)液。(5)轉染:把A/B復合物緩緩加入培養(yǎng)液中,搖勻,37℃溫箱置6~24小時,吸除無血清轉染液,換入正常培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。(6)瞬時轉染后,可在48h-72h細胞長滿之后,提取細胞蛋白或者RNA,驗證敲減/過表達效率。加入混合液,將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。杭州正規(guī)細胞高效轉染試劑哪家好

這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。蕪湖細胞高效轉染試劑哪里買

細胞轉染實驗簡介:實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入;磷酸鈣法和脂質體法是利用不同的載體物質攜帶質粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現在對于很多普通細胞系,一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法蕪湖細胞高效轉染試劑哪里買