原代細(xì)胞的獲?。?.培養(yǎng)時間無論是酶消化法還是組織塊法,取樣后培養(yǎng)時間較少需要一周以上的時間,期間可換液或者傳代。2.換液時間無論酶消化法還是組織塊法,在培養(yǎng)期間需要隨時關(guān)注細(xì)胞的生長狀況,需觀察其是否貼壁,是否污染,組織塊法要觀察是否有細(xì)胞遷移出來。正常情況下48~72h可換液一次。3.細(xì)胞狀態(tài)判斷正常貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)幾天后,會逐漸貼滿整個瓶底或者皿底,有的呈纖維狀,有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細(xì)胞圖(左:小鼠成纖維細(xì)胞;右:雞胚成纖維細(xì)胞;下:人成纖維細(xì)胞)。原代細(xì)胞是指從機(jī)體取出后立即培養(yǎng)的細(xì)胞。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家
原代細(xì)胞體外培養(yǎng)現(xiàn)狀:原代細(xì)胞自然生長有兩種方式,錨定依賴或非錨定依賴,這主要取決于它們在體內(nèi)的組織來源:外周血(非錨定依賴)或固體組織部位(錨定依賴)。原代細(xì)胞一旦分離后,24-48h內(nèi)需要進(jìn)行貼壁或起始,開始培養(yǎng)。廣義地說,所有的哺乳動物細(xì)胞,無論其類型或來源,都需要在與人類生理條件非常相似的條件下生長。此外,它們還需要一個pH可調(diào)節(jié)的生長環(huán)境,并且培養(yǎng)基中需包含細(xì)胞類型特定的營養(yǎng)因子、生長因子、葡萄糖和/或物品。為了確定一種特定細(xì)胞類型在低至無血清培養(yǎng)基中正常生長和功能所需的較低條件,相關(guān)研究工作已經(jīng)揭示了生長培養(yǎng)基必須包含的基本成分:胰島素、轉(zhuǎn)鐵蛋白、葡萄糖和各種鹽、維生素和氨基酸1。然而,除此之外培養(yǎng)基也可以含有組織和細(xì)胞特異性細(xì)胞因子和增殖、生存所需的生長因子。例如,原代內(nèi)皮細(xì)胞和血管平滑肌細(xì)胞都需要添加L-谷氨酰胺和成纖維細(xì)胞生長因子(FGF),但是,應(yīng)該添加額外的組織特異性因子,以防止成纖維細(xì)胞的生長。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家貼壁細(xì)胞多來自部位組織,而懸浮細(xì)胞多來自血液系統(tǒng)的細(xì)胞。
取材的基本要求和注意事項敘述如下:一、取材的基本要求(1)取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功,取材時應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞,盡快入箱培養(yǎng),若不能即時培養(yǎng),應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi),于4℃存放。若組織塊較大,應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后,切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放,但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基,按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。(2)取材應(yīng)嚴(yán)格無菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無菌條件下進(jìn)行,為了確保無菌,對所取材料若疑有污染的可能,應(yīng)將所取組織在含高濃。
取材的基本要求和注意事項敘述如下:一、取材的基本要求(1)取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功,取材時應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞,盡快入箱培養(yǎng),若不能即時培養(yǎng),應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi),于4℃存放。若組織塊較大,應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后,切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放,但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基,按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。(2)取材應(yīng)嚴(yán)格無菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無菌條件下進(jìn)行,為了確保無菌,對所取材料若疑有污染的可能,應(yīng)將所取組織在含高濃取樣后培養(yǎng)時間較少需要一周以上的時間,期間可換液或者傳代。
傳代接種:當(dāng)原代培養(yǎng)瓶中的細(xì)胞已經(jīng)生長且布滿了所有可用的培養(yǎng)基質(zhì)后,它們必須進(jìn)行傳代以便為繼續(xù)生長提供空間。這通常需要將細(xì)胞盡可能輕柔地從基質(zhì)上用胰酶消化下來。這些酶類似于原代培養(yǎng)中使用的酶,它能夠打斷使細(xì)胞粘附到基質(zhì)上的蛋白鍵。有些細(xì)胞株可以通過輕輕刮除培養(yǎng)瓶底部的細(xì)胞加以收集。收集之后,將細(xì)胞懸液進(jìn)行進(jìn)一步的分散并置于新的培養(yǎng)瓶中。當(dāng)細(xì)胞過多時,則可以用合適的低溫保護(hù)的試劑,如二甲基亞砜或甘油進(jìn)行小心冰凍,然后置于低溫環(huán)境(-130℃以下)中,直到需要再次使用。能夠進(jìn)行懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞,其生命力一般都比較旺盛。蕪湖原代細(xì)胞分離試劑盒生產(chǎn)廠家
培養(yǎng)時間無論是酶消化法還是組織塊法。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家
原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項:1.收到細(xì)胞時,要鏡下觀察是否有污染情況;收到細(xì)胞的前幾天,要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄,以防細(xì)胞出現(xiàn)問題后,可以跟公司很好地溝通。2.收到細(xì)胞后,不要馬上處理。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急,可靜置過夜。3.細(xì)胞的靠前次傳代,一定要密度高一些傳代,原代細(xì)胞傳代密度低,很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時(內(nèi)皮細(xì)胞,貼壁為例),0.25%+0.53nM的胰酶消化,1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec,再加入5ml培養(yǎng)基(正常消化貼壁細(xì)胞,我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1,但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶)。5.原代細(xì)胞不建議凍存,因為凍存很容易復(fù)活不成功。如果要凍存的話,建議在P2或P3代凍存,凍存液中的血清越多越好,建議比例9(血清):1(DMSO)。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時,置于37-38度水浴融化細(xì)胞,并加入10ml培養(yǎng)液(正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時,也可以使用這種比例,復(fù)蘇成活率會較大提高),離心重懸鋪板。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家