細胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉(zhuǎn)染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉(zhuǎn)染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時加入。加入過早會引起未轉(zhuǎn)染細胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細胞死亡??蓪崟r觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。這會導致和轉(zhuǎn)染相關的細胞行為的變化。長沙細胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家
轉(zhuǎn)染的注意事項:有血清時的轉(zhuǎn)染血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不含血清,在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。轉(zhuǎn)染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液:在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物準備過程以及復合物同細胞接觸過程。在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基,因為血清會影響復合物的形成。但在復合物形成后,在加入細胞中前可以加入血清。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時會有所不同,因此如果你想在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內(nèi)保持健康。對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。徐州細胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪里買在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。
細胞轉(zhuǎn)染常用步驟:1.轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后,根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時。
細胞電轉(zhuǎn)染實驗的幾點建議:1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉(zhuǎn)染實驗非常重要,電場強度不能過高,過高會增加細胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值,實驗前應測定所轉(zhuǎn)染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細胞一般選取處于對數(shù)生長期的細胞(15代以內(nèi),傳代后2d)。因為處于對數(shù)生長期的細胞分裂旺盛,表面結構致密比穩(wěn)定期的細胞差,電轉(zhuǎn)后,細胞膜的恢復能力強,而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA.在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點。
如何高效率實現(xiàn)細胞轉(zhuǎn)染:陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。脂質(zhì)體(liposome)是一種人工膜,在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質(zhì)體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物,當復合物接近細胞膜時,通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體(endosomes)進入細胞,通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓,使內(nèi)體結構破壞,釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內(nèi)。對于普通細胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素,通過實驗優(yōu)化合適的轉(zhuǎn)染條件對于轉(zhuǎn)染效率的提高很重要。蛋白表達和培養(yǎng)基的選擇哺乳動物細胞系合成可溶的。青島正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹
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細胞轉(zhuǎn)染實驗簡介:實驗材料與器材:1、材料293T細胞、MyoD表達質(zhì)粒和EGFP表達質(zhì)粒、DMEM培養(yǎng)基、鏈霉素/青霉素(雙抗)、FCS(小牛血清)、PBS(磷酸鹽緩沖溶液)、胰酶/EDTA消化液、轉(zhuǎn)染試劑(TransFast)2、器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip頭酒精燈、廢液缸、血球計數(shù)板、渦旋振蕩器、恒溫水浴箱、臺式離心機、35mm培養(yǎng)皿、轉(zhuǎn)染管、15ml離心管、觀察用倒置顯微鏡熒光顯微鏡和CCD。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要問題,通過實驗摸索的合適轉(zhuǎn)染條件對于效率的提高有巨大的作用。長沙細胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家