MMP13免疫熒光IF

免疫熒光通過抗體與示蹤物質(zhì)結(jié)合，利用抗原-抗體結(jié)合反應(yīng)，進(jìn)而對抗原所在的細(xì)胞或組織進(jìn)行定性或定量。由于熒光素所發(fā)的熒光可在熒光顯微鏡下檢出，熒光素受激發(fā)光的照射而發(fā)出明亮的熒光，可以看見熒光所在的細(xì)胞或組織，利用定量技術(shù)測定含量，從而可對抗原進(jìn)行細(xì)胞定性和定位分析。細(xì)胞免疫熒光用途：快速直觀顯示所檢測蛋白的細(xì)胞定位。材料與儀器：樣品：貼壁細(xì)胞；試劑：4% 組織固定液，PBS，Triton X-100，BSA，熒光二抗，免疫熒光染色二抗稀釋液，抗熒光猝滅封片液，0.25% 胰酶；器材：6/12/24 孔板，細(xì)胞爬片（蓋玻片），載玻片，15 ml 離心管。免疫熒光技術(shù)可以用于研究疾病的發(fā)生機(jī)制和醫(yī)治效果評估。MMP13免疫熒光IF

直接免疫熒光：單抗體（一抗）用于免疫染色和檢測目標(biāo)蛋白。熒光素結(jié)合的一抗直接與目標(biāo)抗原結(jié)合，并使用成像顯微鏡觀察。直接免疫熒光的優(yōu)點(diǎn)：由于無需為兩種抗體選擇不同的物種反應(yīng)性，從而降低了物種交叉反應(yīng)性問題。與間接免疫熒光相比，時(shí)間縮短（操作步驟減少）。直接免疫熒光的缺點(diǎn)：不允許通過二抗進(jìn)行信號放大；檢測靈敏度降低；熒光素結(jié)合一抗的選擇有限；與使用熒光二抗的檢測相比，更昂貴。間接免疫熒光：使用兩種抗體（一抗和二抗）進(jìn)行免疫染色并檢測目標(biāo)蛋白。首先，用特異性一抗標(biāo)記目標(biāo)蛋白。然后，熒光素結(jié)合的二抗（與一抗具有不同的物種反應(yīng)性）識別結(jié)合的抗原-抗體復(fù)合物并與一抗結(jié)合。由于一個(gè)以上的二抗可以與一抗結(jié)合，熒光信號被放大，提供了更高的檢測靈敏度。MMP13免疫熒光IF熒光抗體法和熒光抗原法都屬于免疫熒光技術(shù)的范疇。

免疫熒光注意事項(xiàng)：對照實(shí)驗(yàn)的設(shè)置：1、內(nèi)源性組織背景對照：某些細(xì)胞和組織可能有固有的生物學(xué)性質(zhì)，會(huì)產(chǎn)生背景熒光，對結(jié)果產(chǎn)生影響，例如色素脂褐質(zhì)。因此在孵育一抗前，應(yīng)對樣品進(jìn)行觀察，確保抗原本身沒有信號。2、陽性對照：用確認(rèn)含有待測抗原的組織或細(xì)胞，與待測標(biāo)本進(jìn)行統(tǒng)一處理，結(jié)果應(yīng)為陽性，可證明待測抗原有一定活性并且實(shí)驗(yàn)過程中用的試劑及方法均可靠。3、陰性對照：與陽性對照相反，用明確不含有待測抗原的細(xì)胞或組織切片染色，結(jié)果若為陰性，可排除染色過程中由于非特異性染色造成的假陽性結(jié)果。

免疫熒光實(shí)驗(yàn)步驟：1.樣本準(zhǔn)備：細(xì)胞或薄組織。對單層生長細(xì)胞，在傳代培養(yǎng)時(shí)，將細(xì)胞接種到預(yù)先放置有處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中，待細(xì)胞接近長成單層后取出蓋玻片，PBS洗兩次；對懸浮生長細(xì)胞，取對數(shù)生長細(xì)胞，用PBS離心洗滌（1000rpm,5min）2次，用細(xì)胞離心甩片機(jī)制備細(xì)胞片或直接制備細(xì)胞涂片。2.固定：取適當(dāng)?shù)墓潭▌┕潭颖尽Ｒ话阌?%PFA固定4℃過夜。固定完畢后的樣本可置于含疊氮納的PBS中4℃保存3個(gè)月。3.洗滌：PBS洗滌5min*3次。4.打孔：選擇合適的通透劑處理樣本，目的是使抗體更容易進(jìn)入細(xì)胞與抗原結(jié)合。免疫熒光技術(shù)在生物醫(yī)學(xué)研究中具有普遍的應(yīng)用前景。

細(xì)胞免疫熒光步驟對大家來說一定是很陌生的，他是一種抗原抗體反應(yīng)，好像對我們來說他顯得很遙遠(yuǎn)的樣子，因?yàn)槲覀儾⒉涣私馑茏鍪裁?，通過這種技術(shù)可以讓我們對抗原或抗體的性質(zhì)、定位一次來分析出更多的數(shù)據(jù)。細(xì)胞免疫熒光，這對很多人來說都是一次聽說這個(gè)東西，也不知道他對我們會(huì)有什么好處與壞處，科學(xué)研究就是這樣子的，普通老百姓是不會(huì)明白其中的道理的，但是這些研究也是確實(shí)的在我們的生活中取得了成果，能夠讓大家過的更加舒適。免疫熒光技術(shù)可以用于研究細(xì)胞遷移和細(xì)胞黏附。CK7免疫熒光分析

使用熒光抗體方法是免疫熒光技術(shù)中常見的操作步驟。MMP13免疫熒光IF

免疫熒光固定（防止離體組織自溶抗原擴(kuò)散），固定液包括：有機(jī)溶劑（甲醇、乙醇等）；交聯(lián)劑（4%PFA、10%中性福爾馬林），固定液的選擇取決于被研究抗原的性質(zhì)及所用抗體的特性，不過，目前甲醛用的還是較多的，但針對磷酸化的抗體，不適合用甲醛，會(huì)導(dǎo)致磷酸蛋白從膜表面轉(zhuǎn)移到胞漿中，故應(yīng)選擇冰冷的無水甲醇或無水乙醇，同時(shí)應(yīng)注意甲醛會(huì)揮發(fā)，在4-8°C不宜儲存太久。固定時(shí)間：取決于組合塊的大小和類型，對于大多數(shù)組織，18-24h較為理想，細(xì)胞固定時(shí)間較短，一般2%的甲醛室溫固定20min即可。以細(xì)胞樣品為例：用4%的多聚甲醛固定爬片15min，PBS浸洗玻片3次，每次3min。MMP13免疫熒光IF