PCR的假陽性主要原因之一出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增帶:PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致,或大或小,或者同時(shí)出現(xiàn)特異性擴(kuò)增帶與非特異性擴(kuò)增帶。非特異性條帶的出現(xiàn),其原因:一是引物與靶序列不完全互補(bǔ)、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環(huán)次數(shù)過多有關(guān)。其次是酶的質(zhì)和量,往往一些來源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶則不出現(xiàn),酶量過多有時(shí)也會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。其對(duì)策有:必要時(shí)重新設(shè)計(jì)引物。減低酶量或調(diào)換另一來源的酶。降低引物量,適當(dāng)增加模板量,減少循環(huán)次數(shù)。適當(dāng)提高退火溫度或采用二溫度點(diǎn)法(93℃變性,65℃左右退火與延伸)。PCR的假陽性主要原因之一出現(xiàn)片狀拖帶或涂抹帶:PCR擴(kuò)增有時(shí)出現(xiàn)涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶。其原因往往由于酶量過多或酶的質(zhì)量差,dNTP濃度過高,Mg2+濃度過高,退火溫度過低,循環(huán)次數(shù)過多引起。其對(duì)策有:減少酶量,或調(diào)換另一來源的酶。②減少dNTP的濃度。適當(dāng)降低Mg2+濃度。增加模板量,減少循環(huán)次數(shù)。pcr檢測實(shí)驗(yàn)成功的訣竅!新疆常見pcr哪家好
PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的高GC含量PCR(GC-richPCR)介紹:具有高GC含量(>65%)的模板由于G和C堿基間的強(qiáng)氫鍵影響,比較難以擴(kuò)增。高GC含量序列同時(shí)也涉及二級(jí)結(jié)構(gòu)。因此,高GC含量序列可使DNA聚合酶在擴(kuò)增時(shí)卡住,從而影響了DNA的合成。為了擴(kuò)增高GC含量片段,雙鏈模板必須分離,以便引物結(jié)合及DNA聚合酶讀取序列。為了克服強(qiáng)GC相互作用,較常用的方法是依靠PCR添加劑或共溶劑來幫助DNA變性(圖6A),如DMSO。這些試劑通常會(huì)降低引物的Tm,所以退火溫度也需做相應(yīng)的調(diào)整。高合成能力的DNA聚合酶由于其與模板的強(qiáng)結(jié)合能力,有助于高GC含量模板的PCR擴(kuò)增(圖6B)。高熱穩(wěn)定性DNA聚合酶也有益于高GC含量PCR擴(kuò)增,因?yàn)楦叩淖冃詼囟龋ㄈ?8℃代替95℃)可促進(jìn)解鏈和PCR擴(kuò)增。安徽pcr價(jià)格英瀚斯生物,專業(yè)分子檢測平臺(tái),高質(zhì)量pcr檢測。
PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的多重PCR(MultiplexPCR))介紹:多重PCR可實(shí)現(xiàn)在同一反應(yīng)管中同時(shí)擴(kuò)增多個(gè)不同的片段。多重PCR不僅意味著節(jié)約時(shí)間、試劑和樣本,同時(shí)使得多個(gè)擴(kuò)增子進(jìn)行同時(shí)比較成為可能。當(dāng)一個(gè)反應(yīng)管中存在多個(gè)引物對(duì)時(shí),如在多重PCR中,非特異性擴(kuò)增和擴(kuò)增效率的降低是較關(guān)注的問題,因?yàn)榉磻?yīng)的優(yōu)化不可能針對(duì)所有的引物對(duì)和片段。因此,引物的設(shè)計(jì)至關(guān)重要,以減少錯(cuò)配引起的非特異性擴(kuò)增。引物序列對(duì)于目標(biāo)片段應(yīng)該是獨(dú)特的,且所有引物的Tm值差異應(yīng)在5℃內(nèi)。在進(jìn)行多重PCR前,每個(gè)引物對(duì)應(yīng)在單個(gè)反應(yīng)中驗(yàn)證其特異性和擴(kuò)增效率。而且,不同大小的擴(kuò)增子應(yīng)在凝膠電泳中可區(qū)分開,以便鑒定。除了引物設(shè)計(jì)和擴(kuò)增子大小,熱啟動(dòng)DNA聚合酶和特殊優(yōu)化的PCR緩沖液對(duì)于多重PCR也是必需的,它們可有助于擴(kuò)增的成功率和擴(kuò)增的特異性。
PCR的特異性影響因素有很多,在此我們作一歸納,供大家參考:①退火步驟的嚴(yán)格性:提高退火溫度可以減少不匹配的雜交,從而提高特異性。②減短退火時(shí)間及延伸時(shí)間可以減少錯(cuò)誤引發(fā)及錯(cuò)誤延伸。③引物二聚體是較常見的副產(chǎn)品,降低引物及酶的濃度也可以減少錯(cuò)誤引發(fā),尤其是引物的二聚化。④改變mgcl2(有時(shí)kcl)濃度可以改進(jìn)特異性,這可能是提高反應(yīng)嚴(yán)格性或者對(duì)taq酶的直接作用。一般認(rèn)為PCR產(chǎn)物應(yīng)在48h以內(nèi)完成電泳檢測,有些比較好于當(dāng)日電泳檢測,大于48h后帶型就會(huì)出現(xiàn)不規(guī)則,甚至消失。pcr檢測知識(shí)要點(diǎn)總結(jié)匯總。
PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的Touch-downPCR介紹:Touch-downPCR又稱降落PCR.即選定一個(gè)溫度范圍,如50—35℃,每降1-2℃進(jìn)行1-2個(gè)循環(huán),然后在50度下進(jìn)行15個(gè)循環(huán)。Touch-down的原理隨著退火溫度的降低,特異性逐步降低,但特異性條帶在溫度較高時(shí)已經(jīng)擴(kuò)增出來,其濃度遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過非特異性條帶,隨著退火溫度的降低,特異性條帶優(yōu)先被擴(kuò)增。選擇初始復(fù)性溫度的原則起始復(fù)性溫度應(yīng)該比引物的Tm值高出5-10度,然后每個(gè)循環(huán)遞減1-2度Touch-downPCR的應(yīng)用范圍lowcopyoftargetedDNA;highdegreedegeneracy(orlessspecific)ofthefirstsetofprimers;做pcr檢測,需要注意哪些事項(xiàng)?黑龍江細(xì)胞pcr實(shí)驗(yàn)
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PCR方法主要可以分為三類:終點(diǎn)PCR、qPCR和dPCR。終點(diǎn)PCR終點(diǎn)PCR是較原始、較簡單的PCR方法,如今仍在被我們普遍使用。使用者只能在PCR反應(yīng)結(jié)束之后,通過凝膠電泳、毛細(xì)管電泳等方法對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行檢測。終點(diǎn)PCR本身是無法定量的,因?yàn)樵摲磻?yīng)產(chǎn)出的DNA量不一定能反映較初情況。舉例來說,不同樣品和序列的擴(kuò)增效率是有差異的。qPCR和dPCR研究者們通過兩種途徑克服了PCR定量分析的挑戰(zhàn):實(shí)時(shí)定量PCR(qPCR)和數(shù)字PCR(dPCR)。qPCR主要是利用插入性染料或熒光探針(比如TaqMan),人們可以通過監(jiān)控PCR過程中的熒光強(qiáng)度比較多個(gè)樣品的DNA水平。數(shù)字PCR(dPCR)的基本工作原理很簡單,先將樣品劃分為多個(gè)PCR反應(yīng),每個(gè)反應(yīng)較多只含有一個(gè)模板。然后通過計(jì)數(shù)正負(fù)反應(yīng)來確定初始樣品中模板分子的數(shù)量。新疆常見pcr哪家好
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